DC細胞培養SOP

2020-11-23 生物谷

一、臍血MNC分離:

1、將臍血袋剪開,分裝在50ml離心管中,每管20ml。

2、離心1500rpm,10min。

3、取出上層血漿,送質檢部檢測病毒和支原體。

4、取出分界處附近細胞,用D-hanks重懸,比例為1:1。

5、在50ml離心管中加入20ml Ficoll淋巴細胞分離液,將上述細胞懸液加到Ficoll分離液上方,分離液與細胞懸液比例為2:3。

6、離心2000rpm,25min,20℃,升速slow,降速off。

7、用移液管吸去上層血漿,小心取出分界處白膜層細胞,分到兩個50ml離心管中,每管加D-hanks 40ml重懸。

8、離心400g,8min,4℃,升降速調到最大。

9、吸去上清,細胞沉澱加適量D-hanks重懸。

10、離心400g,8min,4℃,升降速調到最大。

11、吸去上清,細胞沉澱加適量D-hanks重懸。

12、離心400g,8min,4℃,升降速調到最大。

13、吸去上清,細胞沉澱用含1% FBS的RPMI-1640培養基重懸,計數後調整細胞濃度為4*106/ml,接種到T175培養瓶中,置孵箱中孵育2h。

二、DC培養:

1、2h後取出培養瓶,鏡下觀察有細胞貼壁,吸去懸浮的細胞,並加入少量培養基衝洗瓶底兩次,將洗液與懸浮細胞混合,計數後離心後用於培養CIK細胞。

2、根據貼壁細胞數(接種細胞總數減去懸浮細胞數),沿瓶口緩慢加入DC無血清培養基,細胞濃度1*106/ml,並添細胞因子DC-5(0.1μl/ml)和DC-6(0.1μl/ml)。

3、第三天加半量培養基,並補充細胞因子DC-5(0.1μl/ml)和DC-6(0.1μl/ml)。

4、第五天進行促熟,加入腫瘤裂解液10-100μg/ml ,孵育24h。

5、第六天加入DC-A(0.5μl/ml),DC-B(1μl/ml),DC-C(1μl/ml),DC-D(1μl/ml),孵育24h。

6、第七天收穫的成熟DC細胞,將細胞從培養瓶中吸取到50ml離心管中,並加入D-hanks衝洗瓶底兩次,收集細胞。

7、將細胞離心,400g,8min,4℃,升降速調到最大。

8、吸去上清,細胞沉澱加適量D-hanks重懸。

9、離心,400g,8min,4℃,升降速調到最大。

10、吸去上清,細胞沉澱加含10% FBS和CIK-2'(1μl/ml)的RPMI-1640完全培養基重懸到40ml,加入到CIK細胞培養體系中。

三、腫瘤組織消化

1、將手術後取得腫瘤組織於D-hanks中浸泡,清洗表面血汙。

2、將腫瘤組織浸於75%酒精中,超聲10s。

3、將腫瘤組織浸於含500U/mL雙抗的D-hanks中2h。

4、取出腫瘤組織,用D-hanks衝洗後剪碎,放到藍蓋瓶中,加入1倍體積以上的膠原酶NB4(0.2%)和DNase I(5U/mL)消化1-2h。

5、將消化液過濾粗漏,並用適量 D-hanks衝洗濾渣。

6、消化液離心1500rpm,15min。

7、吸去上清,沉澱加適量 D-hanks重懸,過濾300目濾網。

8、離心1500rpm,10min,重複兩次。

9、細胞沉澱用含10% FBS的DMEM培養基重懸,計數,按1*106/mL的濃度接種到培養瓶中。

10、第二天觀察細胞貼壁情況並換液,根據生長情況傳代。

四、腫瘤細胞裂解

1、將培養的腫瘤細胞用胰酶消化後,用D-hanks懸浮,濃度為5*106 /ml,加到凍存管中,每管1mL。

2、將凍存管浸於液氮中冰凍(5~10mim)後於37℃水浴使融化,反覆凍融5次。

3、凍融後離心300g,10min,收取上清。

4、蛋白裂解液經0.22μm濾膜過濾,測蛋白濃度,凍於-80℃待用。

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