生物緩衝液能在加入少量酸或鹼時穩定緩衝系統的pH值,這對創造正常的生理環境起很重要的作用，因為多數細胞僅能在很窄的pH範圍內進行活動,而且需要有緩衝體系來抵抗在代謝過程中出現的pH變化.在生化研究工作中,常常要用到緩衝溶液來維持實驗體系的酸鹼度.研究工作的溶液體系pH值的變化往往直接影響到我們工作的成效.如果提取酶實驗體系的pH值變化或變化過大,會使酶活性下降甚至完全失活.所以我們要學會配製緩衝液.
TRIS作為常用生物緩衝液的一種，常用於生物化學實驗中的TAE和TBE緩衝液（用於核酸的溶解），其氨基可以與醛發生縮合反應。Tris為弱鹼，Tris鹼的水溶液pH在10.5左右，一般加入鹽酸以調節pH值至所需值，即可獲得該pH值的緩衝液，其緩衝液的有效緩衝範圍在pH7.0到9.2之間，但應注意溫度對於Tris的pKa的影響，在室溫25℃下，pKa為8.1。
Tris緩衝液配置方法：
Tris-HCl，Tris-EDTA的配製：
一、1M Tris-HCl (pH 7.4，7.6，8.0) 配製1000ml
配製方法：
1.稱量121.1g Tris置於1000ml燒杯中。
2.加入約800ml的去離子水，充分攪拌溶解。
3.按下表加入濃HCl量調節所需要的pH值。
4.將溶液定容至1000ml。
5.高溫高壓滅菌後，室溫保存。
注意：應使溶液冷卻至室溫後再調定pH值，因為Tris溶液的pH值隨溫度的變化差異很大，溫度每升高1℃，溶液的pH值大約降低0.03個單位。
二、1.5M Tris-HCl (pH 8.8)配製1000ml
配製方法：
1.稱量181.7g Tris置於1000ml燒杯中。
2.加入約800ml的去離子水，充分攪拌溶解。
3.用濃HCl調節pH值至8.8。
4.將溶液定容至1000ml。
5.高溫高壓滅菌後，室溫保存。
注意：應使溶液冷卻至室溫後再調定pH值，因為Tris溶液的pH值隨溫度的變化差異很大，溫度每升高1℃，溶液的pH值大約降低0.03個單位。
三、TE即Tris-EDTA buffer（10mM Tris，1mM EDTA，pH7.4 pH7.6 pH8.0）。
10×TE Buffer (pH 7.4，7.6，8.0) 100mM Tris-HCl，10 mM EDTA 配製1000ml
配製方法：
1. 量取下列溶液，置於1000ml燒杯中。
①1M Tris-HCl Buffer(pH7.4，7.6，8.0) 100ml；
②500mM EDTA(pH8.0) 20ml
2.向燒杯中加入約800ml的去離子水，均勻混合。
3.將溶液定容至1000ml後，高溫高壓滅菌。
4.室溫保存。
注意事項：
1、緩衝液的pH值受溶液濃度影響較大，緩衝液稀釋十倍，pH值的變化大於0.1；
2、 溫度效應大，溫度變化對緩衝液pH值的影響很大，△pKa／℃＝－0.031，例如：4℃時緩衝液的pH＝8.4，則37℃時的pH＝7.4，所以一定要在使用溫度下進行配製，室溫下配製的Tris-HCl緩衝液不能用於0℃～4℃；
3、 易吸收空氣中的CO2，所以配製的緩衝液要蓋嚴密封；
4、 此緩衝液對某些pH電極發生一定的幹擾作用，所以要使用與Tris溶液具有兼容性的電極。