離子交換色譜是蛋白純化技術中常用的一種純化方法,其原理是指被分離物質所帶的電荷可與離子交換劑所帶的相反電荷結合,這種帶電分子與固定相之間的結合作用是可逆的,在改變pH 或者用逐漸增加離子強度的緩衝液洗脫時,離子交換劑上結合的物質可與洗脫液中的離子發生交換而被洗脫到溶液中。由於不同物質的電荷不同,其與離子交換劑的結合能力也不同,所以被洗脫到溶液中的順序也不同,從而被分離出來。
離子交換劑是由不溶於水的網狀結構高分子聚合物骨架構成,骨架上有許多共價結合的帶電基團,如果側鏈是帶正電基團,就可與帶負離子相結合,稱為陰離子交換劑,吸附帶負電蛋白質。如果側鏈是帶負電的基團,則稱為陽離子交換劑。強離子交換樹脂在寬pH 範圍內保持離子化,而弱離子交換樹脂只在窄pH 值內離子化。
絕大多數重組蛋白純化都要用到離子交換。離子交換色譜的基礎是高解析度,可以直接放大規模應用在工業上,柱再生容易,還可以使蛋白濃縮。大多數蛋白質的靜電荷是負值,因此陰離子交換色譜的應用最為廣泛。
離子交換介質首先要考慮目的分子的大小,因為目的分子會影響其接近介質上的帶電功能集團,因此也會影響介質對目的分子的動力載量,從而影響其分離。對於大多數純化步驟來說,建議從開始的階段使用強離子交換柱,可在摸索方法的過程中有一個寬的pH 範圍。對於已知等電點的蛋白質,可根據其等電點來選擇。而未知等電點的蛋白質,在實際操作中常採用這樣的方法,先選擇一個陰離子交換劑,再選擇一個中性的pH緩衝液,將蛋白質樣品透析至pH7.0,然後過陰離子交換柱。根據過柱後的結果確定下一個使用的緩衝液pH。3 流動相的選擇
離子交換色譜的流動相必需是有一定離子強度的並對pH 有一定緩衝能力的溶液。為了避免目的蛋白失活,使用緩衝液可穩定流動相的pH,使之在色譜過程中不發生明顯變化,同時可穩定目的分子上的電荷量,保證色譜結果的重要性。選擇緩衝液一般按照以下原則:陽離子交換劑應選用陰離子緩衝液,可用檸檬酸鹽、磷酸鹽、醋酸鹽、甘氨酸鹽等;陰離子交換劑應選用陽離子緩衝液,可用烷基胺、Tris、氨基乙醇胺、乙二胺、咪唑等;起始緩衝液的濃度應儘可能低(<100mmol/L)這樣可以使色譜柱上更多的吸附分離物質;緩衝液應不含會影響被分離物質活性和溶解度成分,洗脫時儘量不採用pH梯度洗脫。
4 色譜柱的選
離子交換色譜通常選用粗短柱,即高徑比小的色譜柱。典型的離子交換柱高度在5~20cm,高徑比一般小於5。果需要增加離子交換劑的體積,只能從增加柱的直徑而不能增加其高度。如果是連續梯度洗脫,可以適當增加柱的
若目標蛋白和雜蛋白等電點差異較大,目標蛋白通過穿透步驟獲得,通過調節起始緩衝液pH,使目標蛋白與填料之間的靜電作用更強;若目標蛋白和雜蛋白等電點差異較小,目標蛋白通過洗脫步驟獲得,過調節起始緩衝液pH,使目標蛋白與填料之間的靜電作用更強;再調節洗脫溶液的離子強度和pH,使目標蛋白與雜蛋白逐漸分離;選擇合適的離子交換填料及粒徑;柱沒有經過起始緩衝液的充分平衡;降低洗脫流速;調整樣品溶液黏度。
調整樣品pH,使樣品pH 與起始緩衝液pH 保持一致;改變洗脫模式,如將線性梯度模式改變為階段性梯度洗脫;改變洗脫方法,如將pH 洗脫方法改為鹽梯度洗脫方法;改變洗脫強度。三、樣品過於粘稠怎麼處理?6 案例介紹