1. 如何選用特殊細胞系培養基?
培養某一類型細胞沒有固定的培養條件。在MEM中培養的細胞，很可能在DMEM或M199中同樣很容易生長。總之，首選MEM做粘附細胞培養、RPMI-1640做懸浮細胞培養是一個好的開始。
2. 何時須更換培養基?
視細胞生長密度而定， 或遵照細胞株基本數據上之更換時間，按時更換培養基即可。
3. 可否使用與原先培養條件不同之培養基?
不能。每一細胞株均有其特定使用且已適應之細胞培養基， 若驟然使用和原先提供之培養條件不同之培養基， 細胞大都無法立即適應， 造成細胞無法存活。
4 可否使用與原先培養條件不同之血清種類?
不能。血清是細胞培養上一個極為重要的營養來源，所以血清的種類和品質對於細胞的生長會產生極大的影響。來自不同物種的血清， 在一些物質或分子的量或內容物上都有所不同，血清使用錯誤常會造成細胞無法存活。
5 何謂FBS, FCS, CS, HS ?
FBS (fetal bovine serum) 和FCS (fetal calf serum) 是相同的意思， 兩者都是指胎牛血清， FCS 乃錯誤的使用字眼， 請不要再使用。CS (calf serum) 則是指小牛血清。HS (horseserum) 則是指馬血清。
6 培養細胞時應使用5 % 或10% CO2?或根本沒有影響?
一般培養基中大都使用HCO3-/CO32-/H+ 作為pH 的緩衝系統， 而培養基中NaHCO3 的含量將決定細胞培養時應使用的CO2 濃度。當培養基中NaHCO3 含量為每公升3.7 g 時，細胞培養時應使用10 % CO2;當培養基中NaHCO3 為每公升1.5 g 時， 則應使用5 % CO2 培養細胞。
7.Hanks 平衡鹽溶液(HBS)要在空氣中使用，不需要CO2培養箱。原因是什麼?Hanks 平衡鹽溶液(HBS)和Earles平衡鹽溶液(EBS)有什麼本質的功能差別?
HBS和 EBS 的主要差別在於碳酸氫鈉的水平,在Eagles (2.2g/L)中比在Hanks (0.35g/L) 中高。碳酸氫鈉需用高水平的CO2平衡，以維持溶液的PH值。Eagles液在空氣水平的CO2 中，溶液會變鹼，Hanks液在CO2培養箱中會變酸。如果希望在CO2培養箱中保存組織，需要用Eagles液，。如果僅僅是清洗將要在細胞培養基中儲存的組織，用Hanks液就可以了。
8. 細胞之接種密度為何?
依照細胞株基本數據上之接種密度或稀釋分盤之比例接種即可。細胞數太少或稀釋的太多亦是造成細胞無法生長之一重要原因。
9. 懸浮性細胞應如何繼代處理?
一般僅需持續加入新鮮培養基於原培養角瓶中， 稀釋細胞濃度即可， 若培養液太多時， 可將培養角瓶口端稍微抬高， 直到無法容納為止。分瓶時取出一部份含細胞之培養液至另一新的培養角瓶， 加入新鮮培養基稀釋至適當濃度， 重複前述步驟即可。
10.冷凍管應如何解凍?
取出冷凍管後， 須立即放入37 °C 水槽中快速解凍， 輕搖冷凍管使其在1 分鐘內全部融化， 並注意水面不可超過冷凍管蓋沿， 否則易發生汙染情形。另冷凍管由液氮桶中取出解凍時， 必須注意安全， 預防冷凍管之爆裂。
11. 細胞冷凍管解凍培養時， 是否應馬上去除DMSO?
除少數特別註明對DMSO 敏感之細胞外， 絕大部分細胞株(包括懸浮性細胞)， 在解凍之後， 應直接放入含有10-15ml新鮮培養基之培養角瓶中， 待隔天再置換新鮮培養基以去除DMSO 即可， 如此可避免大部分解凍後細胞無法生長或貼附之問題。
12. 附著性細胞繼代時所使用之trypsin-EDTA 濃度?應如何處理?
一般使用之trypsin-EDTA 濃度為0.05% trypsin-0.53mMEDTA.4 Na。第一次開瓶後應立即少量分裝於無菌試管中， 保存於–20 °C，避免反覆冷凍解凍造成trypsin 之活性降低， 並可減少汙染之機會。
13.欲將一般動物細胞離心下來，其離心速率應為多少轉速?
欲回收動物細胞， 其離心速率一般為300xg (約1,000rpm)，5 - 10 分鐘， 過高之轉速， 將造成細胞死亡。
14. 細胞冷凍培養基之成份為何?
動物細胞冷凍保存時最常使用的冷凍培養基是含5 - 10 %DMSO (dimethyl sulfoxide) 和90 - 95 % 原來細胞生長用之新鮮培養基均勻混合之。注意：由於DMSO 稀釋時會放出大量熱能， 故不可將DMSO 直接加入細胞液中， 必須使用前先行配製完成。
15.DMSO 之等級和無菌過濾之方式為何?
冷凍保存使用之DMSO 等級， 必須為Tissue culture grade之DMSO (如Sigma D2650)， 其本身即為無菌狀況， 第一次開瓶後應立即少量分裝於無菌試管中， 保存於4°C， 避免反覆冷凍解凍造成DMSO 之裂解而釋出有害物質， 並可減少汙染之機會。若要過濾DMSO， 則須使用耐DMSO 之Nylon 材質濾膜。
16.冷凍保存細胞之方法?
冷凍保存方法一: 冷凍管置於4 °C 30~60 分鐘→ (-20 °C30 分鐘*) → -80 °C 16~18 小時(或隔夜) → 液氮槽vaporphase 長期儲存。
冷凍保存方法二: 冷凍管置於已設定程序之可程序降溫機中每分鐘降1-3 °C 至–80 °C 以下， 再放入液氮槽vapor phase長期儲存。*-20 °C 不可超過1 小時， 以防止冰晶過大，造成細胞大量死亡，亦可跳過此步驟直接放入-80°C 冰箱中，惟存活率稍微 降低一些。
17. 細胞欲冷凍保存時， 細胞冷凍管內應有多少細胞濃度?
冷凍管內細胞數目一般為1x106 cells/ml vial， 融合瘤細胞則以5x106 cells/ml vial 為宜。
18.培養基中是否須添加抗生素?
除於特殊篩選系統中外， 一般正常培養狀態下， 培養基中不應添加任何抗生素。
19.應如何避免細胞汙染?
細胞汙染的種類可分成細菌、酵母菌、黴菌、病毒和黴漿菌。主要的汙染原因為無菌操作技術不當、操作室環境不佳、汙染之血清和汙染之細胞等。嚴格之無菌操作技術、清潔的環境、與品質良好之細胞來源和培養基配製是減低汙染之最好方法。
20.如果細胞發生微生物汙染時，應如何處理?
原則上：直接滅菌後丟棄之。
當重要的培養汙染時，研究者可能試圖消除或控制汙染。首先，確定汙染物是細菌、真菌、支原體或酵母，把汙染細胞與其它細胞系隔離開，用實驗室消毒劑消毒培養器皿和超淨臺，檢查HEPA過濾器。
高濃度的抗生素和抗黴菌素可能對一些細胞系有毒性，因而，做劑量反應實驗確定抗生素和抗黴菌素產生毒性的劑量水平。這點在使用抗生素如兩性黴素B和抗黴菌素如泰樂菌素時尤其重要。下面是推薦的確定毒性水平和消除培養汙染的實驗步驟。
1.在無抗生素的培養基中消化、計數和稀釋細胞，稀釋到常規細胞傳代的濃度。
2.分散細胞懸液到多孔培養板中，或幾個小培養瓶中。在一個濃度梯度範圍內，把選擇抗生素加入到每一個孔中。例如，兩性黴素B推薦下列濃度，0.25，0.50，1.0，2.0，4.0,8.0 mg/ml。
3.每天觀測細胞毒性指標，如脫落，出現空泡，匯合度下降和變圓。
4.確定抗生素毒性水平後，使用低於毒性濃度2～3倍濃度的抗生素的培養液培養細胞2～3代。
5.在無抗生素的培養基中培養細胞一代。
6.重複步驟4。
7.在無抗生素的培養基中培養4～6代，確定汙染是否以已被消除。
21.支原體(mycoplasma) 汙染的細胞， 是否能以肉眼觀察出異狀?
不能。除極有經驗之專家外，大多數遭受支原體汙染的細胞株， 無法以其外觀分辨之。
22.支原體汙染會對細胞培養有何影響?
支原體汙染幾乎可影響所有細胞之生長參數， 代謝及研究之任一數據。故進行實驗前，必須確認細胞為mycoplasma-free，實驗結果之數據方有意義。
23. 偵測出細胞株有支原體汙染時， 該如何處理?
直接滅菌後丟棄，以避免汙染其它細胞株。
24. CO2 培養箱之水盤如何保持清潔?
定期(至少每兩周一次) 以無菌蒸餾水或無菌去離子水更換之。
25.為何培養基保存於4 °C 冰箱中， 顏色會偏暗紅色， 且pH值會越來越偏鹼性?
培養基保存於4 °C 冰箱中， 培養基內之CO2 會逐漸溢出，造成培養基越來越偏鹼性。而培養基中之酸鹼指示劑(通常為phenol red) 的顏色也會隨鹼性增加而更偏暗紅。培養基偏鹼之結果， 將造成細胞生長停滯或死亡。若培養基偏鹼時， 可以通入無菌過濾之CO2， 以調整pH 值。
26. 各種細胞培養用的dish，flask是否均相同?
不同廠牌的dish 或flask， 其所coating 的polymer 不同， 製造程序亦不同， 雖對大部分細胞沒有太大之影響， 惟少數細胞則可能因使用廠牌不同之dish 或flask 而有顯著之生長差異。
27. 購買之細胞冷凍管經解凍後，為何會發生細胞數目太少之情形?
研究人員在冷凍細胞之培養時出現細胞數目太少， 大都是因為離心過程操作上的失誤， 造成細胞的物理性損傷， 以及細胞流失。建議細胞解凍後不要立刻離心， 應待細胞生長隔夜後再更換培養基即可。
28.購買之細胞死亡或細胞存活率不佳可能原因?
研究人員在細胞培養時出現存活率不佳， 常見原因可歸納為：培養基使用錯誤或培養基品質不佳。血清使用錯誤或血清的品質不佳。解凍過程錯誤。冷凍細胞解凍後， 加以洗滌細胞和離心。懸浮細胞誤認為死細胞。培養溫度使用錯誤。細胞置於–80 °C 太久。
29. 收到之冷凍管瓶身破裂，瓶蓋有裂紋，或瓶蓋脫落之原因?
冷凍管瓶蓋裂紋，或瓶身破裂，可能是因為操作者夾取冷凍管時用力不當，造成冷凍管裂損，建議使用止血鉗小心夾取。另冷凍管瓶蓋鬆動或鬆脫，乃因熱脹冷縮之物理現象，冷凍管有可能因此而造成細胞汙染，故冷凍管於放入和取出液氮桶時，均應立刻將冷凍管再一次扭緊。
30.L-穀氨醯胺在細胞培養中重要嗎?它在溶液中不穩定嗎?
L-穀氨醯胺在細胞培養時是重要的。脫掉氨基後，L-穀氨醯胺可作為培養細胞的能量來源、參與蛋白質的合成和核酸代謝。L-穀氨醯胺在溶液中經過一段時間後會降解，但是確切的降解率一直沒有最終定論。L-穀氨醯胺的降解導致氨的形成，而氨對於一些細胞具有毒性。
31.GlutaMAX-I是什麼?培養細胞如何利用GlutaMAX-I?這個二肽有多穩定?
GlutaMAX-I 二肽是一個L-穀氨醯胺的衍生物，其不穩定的alpha-氨基用L-丙氨酸來保護。一種肽酶逐漸裂解二肽，釋放L-穀氨醯胺供利用。
GlutaMAX-I二肽非常穩定，即使在121磅滅菌20分鐘，GlutaMAX-I 二肽溶液有最小的降解，如果在相同條件下，L-穀氨醯胺幾乎完全降解。
32.什麼培養基中可以省去加酚紅?
酚紅在培養基中用作PH值的指示劑：中性時為紅色，酸性時為黃色，鹼性時為紫色。研究表明，酚紅可以模擬固醇類激素的作用，(特別是雌激素)。為避免固醇類反應，培養細胞，尤其是哺乳類細胞時，用不加酚紅的培養基。由於酚紅幹擾檢測，一些研究人員在做流式細胞檢測時，不使用加有酚紅的培養基。
33.如何用臺盼蘭計數活細胞?
用無血清培養基把細胞懸液稀釋到200～2000個/毫升，在0.1毫升細胞懸液中加0.1毫升0.4%的臺盼蘭溶液。輕輕混勻，數分鐘後，用血球計數板計數細胞。活細胞排斥臺盼蘭，因而染成藍色細胞是死細胞。
34.培養基中丙酮酸鈉的作用是什麼?
丙酮酸鈉可以作為細胞培養中的替代碳源，儘管細胞更傾向於以葡萄糖作為碳源，但是，如果沒有葡萄糖的話，細胞也可以代謝丙酮酸鈉。
35.二價離子抑制胰蛋白酶活性嗎?使用胰蛋白酶時加入EDTA的目的是什麼?
二價離子的確抑制胰蛋白酶活性。EDTA用來螯合游離的鎂離子和鈣離子，以便保持抑制胰蛋白酶的活性。建議胰蛋白酶處理細胞前，用EDTA清洗細胞，以消除來自培養基中所有的二價離子。
36.室溫下配製的Tris-HCl溶液，在37℃使用時PH值是多少?
緩衝液PH值隨溫度變化而變化。下表列出了50mM Tris-HC 溶液在4℃，25℃，37℃時，不同PH值。
50mM Tris-HC 溶液在4℃，25℃，37℃時，不同PH值
4°C
25°C
37°C
8.1
8.2
8.3
8.4
8.5
8.6
8.7
8.8
8.9
9.0
9.1
9.2
9.3
9.4
8.5
7.6
7.7
7.8
7.9
8.0
8.1
8.2
8.3
8.4
8.5
8.6
8.7
8.8
7.2
7.3
7.4
7.5
7.6
7.7
7.8
7.9
8.0
8.1
8.2
8.3
8.4
8.5
37.如何從T25瓶中轉移sf9細胞?能用胰蛋白酶消化嗎?
我們推薦使用脫落細胞的方法，此技術破壞性最小，生活力最高。通過使用巴斯德吸液管，讓細胞上培養基流動。作為一種選擇你也可以輕輕拍打培養瓶。只有在絕對必要的情況下，才使用胰酶消化細胞。
38.胰酶消化一個T25瓶的sf9細胞：
1. 去除培養基。
2. 用2ml 1xPBS(足以覆蓋細胞表面)洗滌細胞，去除PBS。
3. 加入2ml 1x胰酶EDTA(恰好覆蓋細胞表面)。
4. 37 ℃孵育5到10分鐘。在儀器下檢測看到5分鐘後它們正在向上移動。
5. 向細胞中加入2ml 細胞培養液，移入錐形管，用2ml培養液洗瓶壁，移入同一錐形管中。(培養基中的FBS終止了胰酶的活性。)
6. 離心(1100rpm)沉澱細胞。去除培養基。
7. 用新的培養基重新懸浮細胞。傳代。
39.在Sf9, Sf21, 和high Five細胞懸浮培養時，肝素的使用量是多少?
為了防止懸浮培養細胞聚集的形成，使用肝素濃度為10單位/毫升細胞懸液。
40.在重新凍存sf9細胞前，它可以傳多少代?隨著傳代的次數的增加，它的感染能力會降低嗎?
通常情況當細胞經過30次傳代後，應該返回凍存。無論什麼時候計數時，都應該檢查細胞活力。如果超過95%的細胞保持有活力和在大約30小時左右加倍，細胞仍然可以使用。如果活力和加倍時間下降，它們的感染力將不在是有效的。
41.貯存在冰箱中的瓶口已開的培養基，在放置幾天後顏色變紫?
這主要是由於在暴露到周圍的CO2水平時，碳酸氫納導致了pH值的上升。您可以在使用前鬆開瓶口，在CO2培養箱孵育培養基10-15分鐘，來校正溶液的pH值(確定鬆開瓶口以保證氣體交換)。
42. 細胞培養基偶然被凍，可否繼續使用?
如果細胞培養基偶然被凍，您應該熔化培養基並觀察是否有沉澱產生。如果沒有沉澱產生，培養基可以正常使用，如果出現沉澱，只能丟棄這些培養基。
43. 無血清培養與有血清培養使用的抗生素量一樣嗎?
當在無血清培養基中添加抗生素時，降低至少在有血清培養基中所使用濃度的50%。血清蛋白會結合和滅活一些抗生素。在無血清培養條件下，抗生素不被滅活，可能對於細胞達到毒性水平。
44. 培養基中添加了血清和抗生素後，可長期保存嗎?
一旦您在新鮮培養基中添加了血清和抗生素時，您應該在兩到三周內使用它。因為一些抗生素和血清中的基本成分在解凍後就開始降解。
45.培養基及其它添加物和試劑可反覆凍融嗎?
大部分添加物和試劑最多可以凍融3次，如果次數更多都會在包含蛋白的溶液引起一定水平的降解和沉澱，將會影響它的性能。
46.為什麼要在溶解的一周內使用貯存在4℃冰箱中的液體胰蛋白酶溶液?
胰蛋白酶在4℃就可能開始降解，如果在室溫下放置超過30分鐘，就會變得不穩定。
47.保存血清最好的方法?
我們建議血清應保存在-5℃至-2O℃。若存放於4℃時，請勿超過一個月。若一次無法用完一瓶，建議無菌分裝血清至恰當的滅菌容器內，再放回冷凍。
48. 如何解凍血清才不會使產品質量受損?
將血清從冷凍箱取出後，先置於2～8℃冰箱使之融解，然後在室溫下使之全融。但必須注意的是，融解過程中必須規則地搖晃均勻。
49. 血清解凍後發現有絮狀沉澱物出現，該如何處理?
血清中沉澱物的出現有許多種原因，但最普遍的原因是由於血清中脂蛋白的變性所造成，而血纖維蛋白(形成凝血的蛋白之一)在血清解凍後，也會存在於血清中，亦是造成沉澱物的原因之一。但這些絮狀沉澱物，並不影響血清本身的質量。
若欲去除這些絮狀沉澱物，可以將血清分裝至無菌離心管內，以400g稍微離心,上清液即可接著加入培養基內一起過濾。最好不使用過濾的方法去除這些絮狀沉澱物，因為它可能會阻塞過濾膜。
50. 為什麼要熱滅活血清?
加熱可以滅活補體系統。激活的補體參與溶解細胞事件，刺激平滑肌收縮，細胞和血小板釋放組胺，激活淋巴細胞和巨噬細胞。在免疫學研究，培養ES細胞、平滑肌細胞時，推薦使用熱滅活血清。
51. 有必要做熱滅活嗎?
實驗顯示，經過正確處理的熱滅活血清，對大多數的細胞而言是不需要的。經此處理過的血清對細胞的生長只有微小的促進，或完全沒有任何作用，甚至通常因為高溫處理影響了血清的質量，而造成細胞生長速率的降低。而經過熱處理的血清，沉澱物的形成會顯著的增多，這些沉澱物在倒置顯微鏡下觀察，像是「小黑點」，常常會讓研究者誤以為是血清遭受汙染，而把血清放在37℃環境中，又會使此沉澱物更增多，使研究者誤認為是微生物的分裂擴增。
若非必須，可以不需要做熱處理這一步。不但節省時間，更確保血清的質量!
52. 為什麼儲存在冰箱中的胎牛血清會出現沉澱?
有些胎牛血清產品沒有預老化，儲存在2-8℃時，血清中的各種蛋白和脂蛋白(如冷凝集素、纖維蛋白原、玻粘連蛋白等)可能聚集而形成沉澱或可見的混濁。這應該不會影響血清的質量。推薦在-20℃儲存胎牛血清，避免反覆凍融。
53. 如何避免沉澱物的產生?
我們建議您在使用血清的時候，注意下列的操作:
(1)解凍血清時，請按照所建議的逐步解凍法(-20℃至4℃至室溫)，若血清解凍時改變的溫度太大(如-20℃至37℃)，非常容易產生沉澱物。
(2)解凍血清時，請隨時將之搖晃均勻，使溫度及成分均一，減少沉澱的發生。
(3)請勿將血清置於37℃太久。若在37℃放置太久，血清會變得混濁，同時血清中許多較不穩定的成分也會因此受到損害，而影響血清的質量。
(4)血清的熱滅活非常容易造成沉澱物的增多，若非必要，可以無須做此步驟。
(5)若必須做血清的熱滅活，請遵守56℃，30分鐘的原則，並且隨時搖晃均勻。溫度過高，時間過久或搖晃不均勻，都會造成沉澱物的增多。