蛋白含量測定採用考馬斯亮藍檢測法(Bradford檢測法)和A280光吸收法,具體操作按文獻[13]進行。
a) 硼酸緩衝液儲備液(20 mmol/L EDTA,0.02% Triton-X100,pH8.5 1 mol/L硼酸緩衝液)
稱取硼酸6.185 g,硼砂9.535 g,EDTA 1.169 g,10% Triton X-100 400 μL,ddH2O定容到200 mL。
b) 尿酸稀釋液(1 mmol/L EDTA,0.001% Triton X-100,pH8.5 50 mmol/L硼酸緩衝液)
取硼酸緩衝液儲備液8 mL加入ddH2O 152 mL,檢測pH=8.5。
c) 尿酸酶工作溶液儲備液(0.01% 尿酸,1 mmol/L EDTA,0.001% Triton X-100,pH8.5 50 mmol/L硼酸緩衝液,用棕色瓶冷凍保存)
準確稱取10 mg尿酸溶解於稀釋液中,並準確定容至100 mL,此溶液作為儲備液保準於4℃,測定活性時用相同緩衝液稀釋10倍使用。
d) 尿酸酶酶活測定工作液(0.001%尿酸,1 mmol/L EDTA,0.001% Triton X-100,pH8.5 50 mmol/L硼酸緩衝液,用棕色瓶冷凍保存)
將尿酸酶工作溶液儲備液稀釋10倍即得。
1.2.2.2 酶活性測定過程[14]
先加入2 mL尿酸溶液和0.5 mL ddH2O於試管中,於40℃水浴中保溫5 min。加入0.5 mL適當稀釋的酶液到試管中,準確反應5 min後,加入0.2 mL 20% KOH終止反應。根據尿酸於290 nm處的特徵吸收,測定尿酸被尿酸酶氧化生成尿囊素後,剩餘尿酸在290 nm處吸光值。空白管則先加入KOH,再加入酶液,立即混勻,讀取290 nm處吸光值。
1.2.2.3 酶活力單位的定義[14]
在40℃、pH8.5下,每分鐘催化1 μmol 尿酸分解所需要的酶量定義為1個酶活力單位。
酶活力(U/mg)=(U/mL)×1/C
Vt:總體積(3.2 mL),Vs:樣品體積(0.5 mL),t:反應時間(5 min),12.04:測試條件下的尿酸摩爾消光係數, 1.0:比色皿光徑(cm),df:稀釋倍數,C:酶濃度(mg/mL)。
1.2.2.4 尿酸濃度標準曲線
將尿酸酶工作液儲備液用pH8.5 50 mmol/L硼酸緩衝液稀釋至尿酸濃度為0.06 mmol/L,按表1.2加入0.06 mmol/L尿酸溶液、pH8.5 50 mmol/L硼酸緩衝液,每組測定樣分別作3個平行測試對照。
表1.1:測定尿酸濃度標準曲線方法
Table 1.1: Standard curve of uric acid
編號
0.06 mmol/L尿酸(μL)
pH8.5 50 mmol/L硼酸緩衝液(μL)
尿酸終濃度(mmol/L)
0
0
200
0
1
40
160
0.012
2
60
140
0.018
3
80
120
0.024
4
100
100
0.030
5
120
80
0.036
6
140
60
0.042
7
160
40
0.048
8
180
20
0.054
9
200
0
0.060
各管搖勻後靜置約1 min,以不加尿酸的空白管(管號0)調零,用分光光度計測定290 nm處的光吸收值。以尿酸濃度對290 nm處的光吸收值作圖,得到尿酸濃度標準曲線(圖1.1)。
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