液相串聯質譜測定麵條和米粉中的硫脲

2021-01-17 生物谷

摘要:硫脲又稱硫代尿素,是一種紡織品的化學漂白劑,曾一度作為防腐劑,廣泛用於各類需要漂白、保鮮防腐的食品。向食品中加入硫脲可阻止褐變,表觀光亮,略帶半透明。硫脲被人體攝入後危害健康,抑制甲狀腺和造血器官的機能,引起中樞神經麻痺及呼吸和心臟功能降低等,甚至導致死亡。

建立了米麵製品中硫脲的液相色譜串聯質譜(LCMS/MS)測定方法。實驗優化了樣品提取方法、液相色譜條件和質譜參數。樣品用80%乙醇超聲波提取,離子交換色譜分離,色譜柱為NUCLEOSIL1005SA陽離子交換柱,流動相為乙腈(1%乙酸 0.2%乙酸銨)水溶液(30∶70),流速0.5mL/min。採用電噴霧質譜正離子模式電離,多反應選擇離子檢測,檢測離子對為m/z77/60和m/z77/43,其中m/z77/60為定量離子對。結果表明:本方法簡便快速、準確可靠,相對標準偏差<4.0%;回收率為83%~90%;檢出限為0.5mg/kg;定量下限為5mg/kg。

【關鍵詞】硫脲,液相色譜,串聯質譜,麵條,米粉

1引言

由於硫脲毒性大,我國已不允許其作為食品添加劑使用。近年有報導,我國東南沿海曾有用硫脲作為麵條的增白劑、增筋劑,而目前我國尚無食品中硫脲測定的相關標準方法。在當今食品安全問題嚴峻的狀況下,迫切需要儘快建立其檢測方法。

目前,空氣、水、土壤和生物等材料中硫脲的檢測方法已有報導[1~4],通常採用高效液相色譜法;Raffaelli等[5]報導了用大氣壓化學電離質譜法測定廢水中的硫脲。但至今未見食品中硫脲檢測的相關報導。由於食品基質複雜,採用液相色譜法幹擾很大,且靈敏度較低。本研究採用液相色譜串聯質譜(LCMS/MS)法檢測麵條和米粉中的硫脲,考察了樣品的提取方法,優化了色譜條件和質譜條件。本方法簡便快速、準確可靠,檢出限為0.5mg/kg;定量下限為5mg/kg,適用於麵條、米粉等米麵製品中硫脲的測定。

2實驗部分

2.1儀器與試劑

Agilent1200LC/6410BMS液相色譜/串聯四級杆質譜聯用儀;AS3120超聲波發生器(AutoScience公司),功率250W,頻率33kHz。

硫脲(Thiourea,純度≥98.0%);硫脲標準溶液的配製:以水為溶劑配製質量濃度為1000mg/L的標準溶液,經0.22μm濾膜過濾後作為儲備液。使用時用水逐級稀釋至所需濃度;乙腈和甲醇(HPLC級);乙酸、乙酸胺、乙醇等(分析純,廣州化學試劑廠);實驗用水為二次蒸餾水。

2.2樣品預處理

將樣品用粉碎機粉碎,取2.0g粉碎後的樣品置於具塞三角瓶中,加入20.0mL80%乙醇溶液,蓋上蓋,超聲波振蕩提取15min,將超聲波提取後的樣品混合物全部轉移至離心管中,以3500r/min離心15min。移取上清液10.0mL至50mL燒杯中,在68℃水浴上濃縮至約1mL。然後轉移至5mL刻度試管中,用水洗滌燒杯多次,洗滌液合併入1.0mL刻度的梨形瓶中,在50℃下吹氮濃縮定容至1.0mL。

2.3LCMS/MS測定

2.3.1HPLC條件色譜柱:NUCLEOSIL1005SA陽離子交換柱(250mm×4.6mm,5μm);流動相:乙腈(1%乙酸 0.2%乙酸銨)水溶液(30∶70,V/V),流速0.5mL/min。進樣量5.0μL。

2.3.2質譜條件電噴霧(ESI)正離子電離模式。乾燥氣(N2)溫度350℃;霧化氣(N2)壓力276kPa;乾燥氣(N2)流量9.00L/min;電噴霧電壓4000V;檢測離子對為m/z77/60和m/z77/43,其中m/z77/60為定量離子對;採集時間200ms;碎裂電壓80V;碰撞能量36V(m/z77/60)和48V(m/z77/43)。

2.3.3測定方法取樣品溶液和標準溶液各5.0μL注入液相色譜串聯四級杆質譜儀進行分析,以其標準溶液峰的保留時間和質譜檢測離子對m/z77/60和m/z77/43為依據進行定性分析,以定量離子對m/z77/60的峰面積計算樣品中硫脲的含量。

3結果與討論

3.1液相色譜條件的優化

考察了C18柱、C8柱、NH2鍵合相柱及陽離子交換柱對硫脲分離的影響。結果表明:採用C18色譜柱時,當流動相為乙腈水體系時[4],硫脲幾乎無保留;當乙腈比例降低至10%時,硫脲僅有少許保留,保留時間為2.7min(色譜柱規格為250mm×4.6mm,流速為1.0mL/min,下同);當在流動相中添加庚烷磺酸鹽離子對試劑時,硫脲的保留時間並無明顯增加。採用C8色譜柱時,當流動相為乙腈庚烷磺酸鹽體系時,隨著乙腈比例從65%,40%至5%逐漸減少,硫脲的保留時間從2.9min,3.0min至3.3min逐步增加,但保留時間仍太短。採用NH2鍵合相色譜柱時,當流動相為乙腈水體系時,隨著乙腈比例依次從70%,80%,90%增加到100%,硫脲的保留時間也從3.47min,3.55min,3.65min延長到3.79min,但增加幅度不大,保留時間較短,且峰形較寬。採用陽離子交換色譜柱時,當流動相為乙腈磷酸鹽緩衝液和乙腈乙酸銨緩衝液體系時,乙腈比例為30%時,硫脲的保留時間為3.4min,峰形較理想;隨著乙腈比例的減少,硫脲的保留時間雖逐步增加,但增加幅度不大且色譜峰展寬嚴重;改變緩衝液的濃度和pH值,硫脲的保留時間並無明顯改變。

以上實驗表明,硫脲由於相對分子質量很小,極性較強,在各類型的色譜柱上保留時間均較小,用液相色譜紫外檢測法測定實際樣品時受到的幹擾較嚴重。因此採用液相色譜串聯質譜法測定。考慮到質譜法測定不能使用離子對試劑、磷酸鹽緩衝液作流動相,並綜合考慮保留時間和色譜峰形,故選擇陽離子交換色譜柱和乙腈乙酸銨緩衝液體系。經實驗本方法最終選擇的色譜柱為NUCLEOSIL1005SA陽離子交換柱(250mm×4.6mm,5μm),流動相為乙腈(1%乙酸 0.2%乙酸銨)水溶液(30∶70,V/V),流速0.5mL/min。此條件下硫脲的保留時間為6.7min,峰形較好。

3.2質譜參數的優化

用0.5mg/L硫脲標準溶液,採用ESI正離子模式進行一級質譜掃描,得到硫脲準分子離子峰m/z77,即[M H] 。以m/z77為母離子作二級質譜,得到硫脲碎片離子峰m/z60和43,即[M H-NH3] 和[M H-H2S] 。選擇m/z77/60和m/z77/43離子對進行MRM模式檢測,並對各質譜參數進行優化。優化後的質譜條件見2.3.2節。硫脲的( )ESI二級質譜圖見圖1。優化後的硫脲標準溶液的HPLCMS/MS色譜圖見圖2。

3.3樣品前處理條件的優化

3.3.1不同提取劑對硫脲提取效果的影響比較了用氯仿、甲醇、乙醇、乙腈和水作提取劑的提取效果。在2.0g粉碎後的麵條樣品中加入11.6mg/L硫脲標準溶液1.0mL,待溶液完全被樣品吸收後,再分別用氯仿、甲醇、乙醇、乙腈和水進行超聲波振蕩提取。按前述LCMS/MS方法測定硫脲的提取效率。結果表明,氯仿幾乎無法提取出硫脲,甲醇、乙醇、乙腈和水的提取效率分別為86.5%,70.0%,67.1%和88.3%,可見以水作提取劑的效率最高。但用水提取時,樣品中的澱粉及其它添加劑也會被提取出來,導致提取液混濁且粘稠,後續處理很麻煩;而用甲醇和乙醇提取雖然效率略低,但提取液較乾淨,處理過程簡便快捷。因此結合二者的優點,考慮用甲醇或乙醇和水的混合溶劑進行提取。分別考察了甲醇比例為20%~80%時的提取效果和乙醇比例為20%~80%時的提取效果,結果見表1。由表1可見,80%乙醇水混合溶劑的提取效果最佳。表1不同比例的醇和水對硫脲的提取效果

3.3.2提取時間對硫脲提取效果的影響考察了超聲波提取10,15,20,25和30min時的提取效果,其回收率分別為87.3%,88.1%,86.3%,85.6%和85.8%。可見超聲波提取時間對硫脲的提取效果影響不明顯,超聲10min後提取率已基本穩定。本實驗選擇超聲波提取時間為15min,可滿足分析要求。

綜合以上結果,確定樣品的最佳前處理條件為2.2節所述。由於採用MRM方式測定,避免了樣品基體雜質的幹擾,故樣品提取後無需淨化即可直接上機分析,簡便快速,回收率較高。

3.4線性範圍、線性方程與檢出限

取硫脲標準儲備液逐級稀釋成0.501,1.002,2.004,5.01,10.02和20.04mg/L的系列標準溶液,進行LCMS/MS分析。以峰面積(A)和質量濃度(ρ,mg/L)作定量工作曲線,線性方程為A=1209ρ-30.91,相關係數為0.9999,在0.5~20mg/L濃度範圍內線性關係良好。當樣品中的硫脲超過此線性範圍時,可適當加大樣品的稀釋倍數。以信噪比S/N=3確定樣品的檢出限為0.5mg/kg,採用標準添加法進行實測確定硫脲的定量下限為5.0mg/kg,可滿足米麵製品中對硫脲的檢測要求。

3.5回收率和精密度

取不含硫脲的麵條和米粉樣品各3組,分別加入5.01,10.02和50.10mg/kg硫脲標準溶液,待完全被樣品吸收後,按實驗方法測定硫脲的回收率,每組樣品平行測定6次,結果見表2。由表2可見,麵條樣品中硫脲在添加水平5~50mg/kg,其回收率為83%~89%,相對標準偏差為0.8%~4.0%;米粉樣品中硫脲在添加水平5~50mg/kg,其回收率為88%~90%,相對標準偏差為1.7%~3.3%。麵條空白及加標樣品的HPLCMS/MS總離子流色譜圖見圖3a和b。本方法回收率較難達到90%以上,可能是基質表2標準加入樣品中硫脲的回收率和相對標準偏差。

 

 

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