顯微操作技術:倒置顯微鏡的用途

2021-01-20 中國教育裝備採購網

    顯微操作技術(micromanipulationtechnique)是指在高倍複式顯微鏡下,利用顯微操作器(micromanipulator)進行細胞或早期胚胎操作的一種方法。顯微操作器是用以控制顯微注射針在顯微鏡視野內移動的機械裝置。

    顯微操作的基礎平臺--倒置研究級顯微鏡(例如caikonXDS-500C)各種活細胞應用實驗,如顯微操作、細胞培養,IVF,ICSI等。

    顯微操作技術(micromanipulationtechnique)是指在高倍複式顯微鏡下,利用顯微操作器(micromanipulator),這是一套能控制顯微注射針在顯微鏡視野內移動的機械裝置,用來進行細胞或早期胚胎操作的一種方法。顯微操作技術包括細胞核移植、顯微注射、嵌合體技術、胚胎移植以及顯微切割等,像是桃莉羊的產制就是運用細胞核移植技術達成的;而基因轉殖(genetransfer)指的是將選殖之外源基因藉由導入體細胞並能穩定的嵌入宿主動物之生殖細胞染色體中之一門技術,基因轉殖動物被定義為經由人為的方式將外源基因引入體內而引起基因改變之動物,並可將遺傳特質傳遞至接續的每一世代中。產制基因轉殖動物可利用基因顯微注射(genemicroinjection)、胚幹細胞(embryonicstemcells,EScells)、精子載體(spermvector)、反轉錄病毒感染(retroviralvectorinfection)及體細胞核移置(somaticcellnucleartransfer)等方法達成,其中顯微注射為目前應用最普遍之方法之一。顯微注射法(microinjection)是利用管尖極細(0.1至0.5μm)的玻璃微量注射針,將選殖之外源基因片段直接注射入原核期胚或是培養的細胞中,然後藉由宿主基因組序列可能發生之重排(rearrangement)、刪除(deletion)、重複(duplication)或易位(translocation)等現象而使外源基因嵌入宿主之染色體內。這種顯微注射術的程序,需有相當精密的顯微操作設備,於製造長管尖時,需用微量吸管拉長器(micropipettepuller),注射時需有固定管尖位置的微量操縱器。這種技術的長處為任何DNA在原則上均可傳入任何種類的細胞內。此法已成功的產制包括小鼠(mouse)、魚、大鼠(rat)、兔子及許多大型家畜,如牛、羊、豬等基因轉殖動物。以顯微注射法轉殖之外源基因較無長度上之限制,目前已證明數百kb之DNA片段均可成功產制出基因轉殖動物。而其缺點為其設備經密昂貴、操作技術需要有相當時間的練習,及每次只能注射相當有限的細胞。

    用於顯微注射用之顯微鏡常使用具有位相差(phasecontrast)與微分幹涉差(differentialinterferencecontrast)功能之倒置顯微鏡(例如上海蔡康光學儀器廠的倒置顯微鏡XDS-300C或者XDS-500D),倒置顯微鏡組成和普通顯微鏡一樣,只不過物鏡與照明系統顛倒,一般正置顯微鏡之物鏡在載物臺之上,照明系統在下,而倒立式顯微鏡之物鏡在下與而照明系統在載物臺之上,倒立式顯微鏡之優點為接物鏡與目鏡間之工作距離較長,可直接將培養皿之置顯微鏡操作臺上進行顯微注射等工作。

    傳統之一般普通顯微鏡無法直接觀察未經染色之透明的活細胞,為了能讓顯微注射技術觀察與操作透明的活細胞樣品,顯微鏡須使用具有位相差與微分幹涉差功能之倒立式顯微鏡。位相差顯微鏡是由P.Zernike於1932年發明,並因此獲得1953年諾貝爾物理獎,這種顯微鏡最大的特點是可以觀察未經染色的透明標本和活細胞,位相差顯微鏡的基本原理是利用透明細胞檢體內部折射率各不相同,把透過標本的可見光的光程差變成振幅差,從而提高了各種結構間的對比度,得到明暗對比的效果,使的透明活細胞各種結構內部細節在亮背景視野中變得清晰可見,位相差顯微鏡之基本構造是利用位相差聚光鏡及內部位相環所構成的環狀光圈,光通過聚光鏡後,產生中空光錐,並在光線穿過檢體後發生折射,偏離了原來的光路,同時被延遲了1/4λ(波長),如果再經過物鏡內的光延遲位環板而成增加或減少1/4λ,則光程差變為1/2λ,兩束光合軸後幹涉加強,振幅增大或減下提高反差。雖然相差顯微鏡可以在透明的細胞樣品提供清析的觀察圖像,但是一般位相差顯微鏡的缺點是會有「光暈」現象的產生,因而導致觀察的景深受限制,無法用以觀察較厚的樣品,較厚的細胞團區域在一般位相差顯微鏡下的清稀度十分糟糕,而且邊緣常產生暈輪效果,如果觀察樣品中有超過85%以上的區域為較厚細胞時,這個問題將非常嚴重,然而顯微注射用之樣品如受精卵細胞或細胞團均具有一定厚度,造成細胞結構和邊緣無法清楚可見,因此顯微注射用的顯微鏡必須要能克服厚樣品的問題。

    為解決活動樣品和厚樣品帶有「光暈」的觀察問題,1952年,Nomarski在相差顯微鏡原理的基礎上發明了微分幹涉差顯微鏡(differentialinterferencecontrastmicroscope)。Nomarski微分幹涉差顯微鏡之優點是能顯示結構的三維立體投影影像,與傳統位相差顯微鏡相比,其標本可略厚一點,折射率差別更大,故影像的立體感更強,產生類似於浮雕的效果。微分幹涉差顯微鏡技術設計比相差顯微鏡要複雜得多,NomarskiDIC利用的是偏振光,有四個特殊的光學組件:偏振器(polarizer)、DIC稜鏡、DIC滑行器和檢偏器(analyzer)。偏振器直接裝在聚光系統的前面,使光線發生線性偏振。在聚光器中則安裝了二個楔形單軸的晶體,如石英,以光軸互相交錯的方式互相接合,稱為Wollaston稜鏡或Nomarski稜鏡,即DIC稜鏡,此稜鏡可將每一光線分離成為二條偏振互相垂直的兩束光(x和y),二者成一小夾角,聚光器將兩束光調整成與顯微鏡光軸平行的方向。最初兩束光相位一致,在穿過標本相鄰的區域後,由於標本的厚度和折射率不同,引起了兩束光發生了光程差。在物鏡的後焦面處安裝了第二個Wollaston稜鏡,即DIC滑行器,它把兩束光波合併成一束,這時兩束光的偏振面(x和y)仍然存在。最後光束穿過第二個偏振裝置,即檢偏器,在光束形成目鏡DIC影像之前,檢偏器與偏光器的方向成直角,檢偏器將兩束垂直的光波組合成具有相同偏振面的兩束光,從而使二者發生幹涉。x和y波的光程差決定著透光的多少,當光程差值為0時,沒有光穿過檢偏器;光程差值等于波長一半時,穿過的光達到最大值,於是在灰色的背景上,標本結構便呈現出亮暗差。為了使影像的反差達到最佳狀態,觀察者可通過調節DIC滑行器的縱行微調來改變光程差,改變光程差可以改變影像的亮度。而調節DIC滑行器則可使標本的細微結構呈現出正或負的投影形象,通常是一側亮,而另一側暗,這便造成了標本的人為三維立體感,產生了類似大理石上的浮雕感覺。DIC顯微鏡使細胞的內部結構,特別是一些較大的細胞器,如核、線粒體等,立體感特別強,因此適合應用於顯微操作技術。目前像基因注入、核移植、轉基因等的顯微操作常需要在這種顯微鏡下進行。

    雖然Nomarski微分幹涉技術可以對付一些細胞團或者組織等較厚的樣品,但它非常昂貴,並且僅僅只能應用在玻璃底的培養皿中,無法直接在廣為研究人員進行細胞培養操作之一般塑料材質的培養皿產生浮雕效果,此外這種技術對於顯微操作技術的所使用的樣品而言,景深還是稍嫌不足,因此在應用上遇到不少問題。有鑑於此,一些其它的可以用於觀察厚樣品的微分幹涉技術也逐漸被開發出來,例如上海蔡康光學儀器廠就推出了自己的浮雕相襯(RC)裝置蔡康浮雕相襯系統能夠產生高反差的3D圖像,類似於DIC效果,可用於塑料器皿中的樣品。浮雕相襯用於細胞受精,使細胞核膜更容易看到和穿刺。適應於所有類型的細胞,組織(無論活體,染色,未染色),晶體表面細節,透明聚合物,玻璃和其它類似材料,尤其適應於顯微操作實驗。

    目前最常用來生產基因轉殖動物的方式為:直接把重組過的DNA注入授精卵的原核(pronuleus)中,將從胚胎提供者的輸卵管中取得的授精卵移到倒立式顯微鏡上的微量注射臺上,然後利用固定吸量管(holdingpipette)固定住,之後注射針則依序穿過zonapellucida,oocytemembrance及malepronuleusmembrane後,將DNA注入,注入時可以見到原核膨大。以小鼠受精卵雄原核之顯微注射為例,顯微注射所使用的受精卵之固定吸管(holdingpipette)及注射針(injectionneedle)之製備困難,除影響操作時間外,亦是影響基因轉殖效率及基因注入後之胚存活及基因轉殖成功與否極其重要的因子。固定吸管之內、外徑分別為30、80μm較為適當的。顯微注射針自針尖起20μm處之外徑為4μm時,可獲得良好的轉殖效率。固定吸管之內徑如太小,會導致吸力不足,對受精卵操控不易,如太大,則受精卵易受傷害,影響胚之存活率。顯微注射針尖如太粗,則導致插入透明帶及原核之阻力增加,且DNA流量過多,受精卵易於裂解,太細則致針內DNA流出速率過慢,且易阻塞,而使DNA無法順利流入原核內,影響注射效率。因此進行受精卵雄原核之顯微注射時,如何製備適用之固定受精卵之吸管及顯微注射針是關乎基因轉殖效率極其重要的因素。

    基因轉殖動物(transgenicanimal)於目前生物及醫學研究方面之應用極為廣泛,基因轉殖小鼠一直是研究外源基因構築型態、染色體嵌插、轉殖基因表現及調節之最佳模式,也是建立基因轉殖技術最好的工具,尤其是在產制基因轉殖家畜之前,如能先以小鼠進行預備試驗是求事半功倍不可或缺之過程。基因轉殖動物應用的領域可以包括研究基因的活動對致癌病毒與癌細胞的生長的影響、基因的活動與免疫細胞間的交互作用與調控的機制、研究基因對於生長的調控機制,以及生物學與遺傳學的機制,也被應用於以人類細胞作為組織及器官移植的發展方面,如基因參與體細胞、胚胎幹細胞及存在各個組織的幹細胞的體外誘導分化研究等等。基因轉殖動物除用於一般基礎研究外,對於製造具治療效果的蛋白質、器官移植、疫苗、毒理實驗、動物品種改良及水產養殖等均有很大的貢獻。雖然截至目前為止,基因轉殖之研發已有若干良好的成果,但尚有若干問題待克服,所以基因轉殖技術之應用與發展將是無可限量。

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