1.待提取樣本儘量避免反覆凍融，否則會導致提取的DNA片段降解或者DNA得率嚴重下降；
2.試劑盒中BufferEB中含有少量EDTA，可能影響下遊實驗，使用時適當稀釋，如果用其他洗脫液洗脫，要確保PH>7.5，PH過低影響洗脫效率；
3.離心柱漂洗完成後，儘可能烘乾柱膜上殘留乙醇，殘留乙醇會影響洗脫效率和下遊實驗效果；如果A260/230值過低，說明樣本提取過程中，漂洗不徹底，有鹽離子殘留，建議增加漂洗次數；
4.對於基因組DNA提取，A260/280值如果低於1.7說明有可能存在蛋白汙染，如果值大於1.9，說明可能存在RNA汙染；如果洗脫樣本時沒有使用BufferEB，而使用ddH20，比值或偏低，因為Ph值會影響吸光值，並不表示樣本純度低；
5.對於植物樣本，樣本處理量無法統一確定，對於一般樣本（菸草，擬南芥等），提取量不超過100mg鮮重組織或者20mg乾重組織，對於複雜樣本（水稻，玉米，榆樹等），建議初始樣本量不超過50mg鮮重或者10mg乾重組織；如果需要較高的DNA量，可以採取多管濃縮的方法提取DNA;
6.對於植物樣本，如果短時間不能低溫處理，建議使用矽膠顆粒乾燥樣本，防止DNA嚴重降解；研磨處理材料過程中儘量不要過量，否則會導致DNA產量低；材料過量也會使樣本出現團塊無法裂解，導致離心柱堵塞，無法獲得高質量DNA;
7.植物組織在降低初始樣品量後，仍舊無法改變裂解液體粘稠，離心柱堵塞，DNA得率低，建議使用本公司BufferPL對樣本預處理1-3次後在進行提取；
8.對於血液樣本，最好使用新鮮血液樣本或者4℃存放少於2天的樣本，否則會嚴重降低DNA產量；儘量避免反覆凍融（不超過3-5次），每一次凍融都會降低DNA得率；
9.對於血液樣本，如果樣本中含有血塊，說明樣本收集時未加入血液抗凝劑；建議重新收集樣本並加入EDTA，肝素，檸檬酸等抗凝劑；
10.在使用紅細胞裂解液處理血液時，確保血液樣本已經恢復到室溫狀態；處理過程中儘可能混勻樣本，防止紅細胞裂解不完全；
11.對於細菌樣本DNA提取，試劑盒中的溶菌酶可以裂解大部分革蘭式陽性細菌，對於特殊細菌如葡萄球菌，需要提高溶菌酶用量（建議10mg/ml溶菌酶使用量增加一倍）和溶葡萄球菌酶（Lysostaphin）共同使用；
12.DNA濃度及純度判斷：[DNA]μg/ml=A260x稀釋倍數x50.0（50.0：DNA的平均吸收係數）；
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