2020年6月4日,細胞生物學平臺邀請Olympus的資深應用工程師高瑩瑩進行了題為「科研顯微圖像的共定位分析」的講座,主要介紹了共定位相關的數字圖像概念,圖像共定位分析的方法及常用參數,圖像採集對共定位結果的影響,以及共定位分析的其他研究方法。整個講座氣氛熱烈,同學和老師們於線上積極互動,一起討論和交流,現整理出精彩問答,供大家學習和交流。
Q:共定位有沒有一個protocol,如樣本處理和圖片採集的過程。
A:不同的軟體操作步驟可能有差異,但基本步驟的邏輯為:1)選定共定位分析的兩個通道,2)設定閾值,篩選有效信號,3)選定信號的灰度值代入後臺的計算公式,4)獲得分析結果,包括但不限:相關係數,重疊係數,共定位分析統計表,共定位圖層。
樣品處理範疇寬廣,可以關注樣品製備專題。
共定位分析圖像採集,包括但不限以下幾點建議:1)設置對照組,陽性或陰性,2)採集高信噪比圖像,3)絕對不可過曝,4)儘可能選擇高辨率成像,5)防止串色,6)使用高標準的復消色差物鏡或專為共定位圖像分析設計的物鏡,例如OLYMPUS完美共定位物鏡PLAPON60XOSC2。7)符合Nyquist採樣率
Q:能分享一下共定位前的樣品製備的protocol嗎?
A:一般樣品製備流程,可以關注樣品製備專題。建議根據自己的樣品性質,查閱文獻,個性化地準備實驗樣品。共定位分析成像,建議在選擇染料/標記蛋白是使用激發-發射光譜分得開的兩種。
Q:為什麼會發生串色?
A:螢光觀察時候常使用螢光染料或螢光蛋白標記,其自身有其光譜特性,每一種染料/蛋白都有特定的激發和發射光譜。當兩種染料/蛋白的激發(Abs)-發射(Em)光譜有重疊時,就有可能在採集時產生串色。
因此,共定位圖像建議使用光譜距離較遠的染料/蛋白,使用濾色片/光柵精確選擇採集的波段,避開重疊的光譜範圍。目前共聚焦顯微鏡的光柵分光可以達到幾個nm的精度,例如FV3000共聚焦的VPH透射型全息體相位光柵,精度可達2nm。
Q:圖像採集時,如何判斷自己的offset設置在合理範圍,根據自己的圖像質量嘛?
A:共聚焦顯微鏡的offset值推薦參考廠家默認值,不同的系統該矯正數值不同。一個粗略的估測建議,正常的採集參數,採集一張無樣本信號的圖像(背景),測量該圖的平均灰度值,從0逐漸增加offset值到該圖信號幾乎為0但不全為0的狀態。
Q:第一個共定位可以看灰度的,是什麼軟體?
A:共定位分析的計算使用像素點的灰度值,共定位的分析結果為相關係數/重疊係數,數值範圍在-1~1之間。許多專業的顯微圖像軟體都有共定位分析模塊,除了廠家分析軟體如cellSens,免費開源軟體FIJI/ImageJ也有共定位分析插件。
Q:有ImageJ共定位圖像處理的protocol嗎?
A:FIJI中的共定位插件可以嘗試用coloc2。FIJI中的插件在其help網頁大都有詳細的參數講解和步驟說明,示例,可以參考網頁信息,完成插件的使用。https://imagejQ:net/Help
Q:怎麼用cellsens軟體獲取共定位參數Rr,R,K1Kr?
A:步驟如圖,選擇通道,設定閾值,共定位分析結果位於step4標記區域。該界面單擊「確定「後會生成統計圖表和新的共定位圖層。
光鏡機組儀器
· 受激發射損耗超高解析度共聚焦顯微鏡
Leica TCS SP8 gSTED 3X(17002186)
· 倒置雷射共聚焦顯微鏡Zeiss
LSM710 3-channel(12027558)
· 倒置雷射共聚焦顯微鏡
Zeiss LSM710 META(09018326)
· 全自動數字玻片掃描系統
Zeiss Axio Scan. Z1(17026728)
· 全自動數字玻片掃描系統
3DHISTECH Pannoramic Scan(A18000062)
· 全自動活細胞顯微成像系統
Nikon Ti2-E(A18000063)
· 活細胞工作站
Olympus IX81(10005154)
· 全內反射顯微鏡
Olympus IX83(17005698)
· 螢光光鑷系統
Lumicks C-Trap G2(A19000044)
· 高配置的數據處理工作站和專業的分析軟體
電鏡機組儀器
· 透射電子顯微鏡日立
H-7650B(08019685)
· 透射電子顯微鏡
FEI Tecnai Spirit(16041491)
· 掃描電子顯微鏡
FEIQuanta 200(08019747)
· 超薄切片機
LeicaEM UC6 (08018130)
· 冷凍超薄切片機
LeicaEM UC7 (15005387)
· 高端數據處理軟體,滿足用戶電鏡數據分析需求提供制樣、切片服務
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光鏡機組:010-62789417-223/191;清華大學醫學科學樓C119/C132
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