如何進行血清外泌體的miRNA標誌物的生信數據挖掘?本文告訴你研究套路!

2021-01-21 醫學方


細胞外囊泡(EVs)在近兩年大火,成為發SCI和申請國自然的熱點。EVs的其中一個重要的應用就是可以作為標誌物用於疾病的診斷,血清的外泌體在體內循環,可以作為無創標誌物去分析,是一個很好的研究方向。而通過生物信息學手段挖掘疾病標誌物已經有很多文章,那麼外泌體的標誌物又怎樣去通過生信分析呢?在這裡,總結了最近剛剛發表的幾篇血清外泌體的RNA標誌物文章,分析其中用到的思路,工具和研究套路。


第一篇文獻是發表於期刊《Journal of Cancer》,影響因子3.182,核心是通過生信+實驗驗證手段,去發現肝轉移(LM)的結直腸癌(CRC)患者的新型循環外泌體miRNA標誌物。


在GEO資料庫中手動搜索後,選擇了三個數據集(GSE35834,GSE81581,GSE98406),這些數據對miRNA在大腸肝轉移,原發性大腸腫瘤和正常大腸黏膜中的表達譜進行了比較分析。結果發現,miR-122的表達在結直腸肝轉移組織中始終顯示出最高的差異倍數變化。並驗證了組織性miR-122的表達水平,發現與原發性大腸腫瘤和正常大腸黏膜相比,miR-122表達在大腸肝轉移中顯著升高。另外,miR-122的表達在CRC細胞系中明顯更高,特別是在SW620細胞中。


這裡驗證採用的就是實驗手段。從患者血清和細胞系上清,分離了外泌體。首先使用透射電子顯微鏡TEM和WB確定分離出來外泌體,緊接著觀察到miR-122在血清中的表達與從等體積血清中分離的純外泌體的表達沒有差異。切除腫瘤後,血清外泌體miR-122的表達明顯下調。我們發現CRC患者血清中外泌體miR-122的表達與CRC組織中的表達呈正相關。接下來,通過使用HT29和SW620細胞確認了外泌體miR-122在培養基中的分泌潛力。研究觀察到兩種細胞系在培養基中外泌體miR-122的表達隨時間和細胞數量的增加而增加。


由於血清外泌體miR-122升高是腫瘤來源的,因此想知道外周血中的外泌體miR-122是否可以預測CRC患者的預後。使用Kaplan-Meier生存分析來探討血清外泌體miR-122表達與CRC患者的臨床結局的關係,結果表明,高血清外泌體miR-122表達的CRC患者,尤其是LM患者。單因素分析表明,血清外泌體miR-122的表達,TNM分期,淋巴結轉移以及肝轉移狀況與CRC患者的OS顯著相關。多因素分析表明,血清外泌體miR-122表達和肝轉移狀況是CRC患者OS的獨立預後因素。


第二篇文獻是發表於期刊《Frontiers in Genetics》,影響因子是3.517,也是通過GEO資料庫分析與在線程序GEO2R集成來選擇候選circRNA,再通過qRT-PCR和ROC分析測試circRNA的表達和診斷用途。


在分析GSE100206和GSE100063數據集中circRNA的差異和豐度表達後,鑑定出59倍變化≥1.5和P值<0.05的循環外泌體circRNAs為差異表達circRNAs。研究選擇hsa-circ-0004771進行研究,因為在前10個上調的基因中,hsa-circ-0004771的表達最為豐富。ROC分析表明,循環外泌體hsa-circ-0004771對將CRC患者與HCs區分的診斷價值非常高。為了進一步證實結果,我們招募了10名CRC患者和10名健康對照,並通過TEM,western blot和nanosight粒子跟蹤分析驗證了從臨床血清樣品中分離出的外泌體。通過qRT-PCR與HCs相比,在CRC患者血清中始終觀察到表達上調。ROC分析表明,循環外泌體hsa-circ-0004771的AUC為0.92,以區分CRC患者與HCs。


為了驗證循環外泌體hsa-circ-0004771的表達失調,對110例CRC患者,35例BID患者和35例HCs的血清樣本進行了測試。發現I / II期CRC患者血清中外泌體hsa-circ-0004771的表達顯著上調,靈敏度為81.43%,特異性為74.29%(P <0.001)。卡方檢驗顯示循環外泌體hsa-circ-0004771的表達與TNM分期和遠處轉移顯著相關。


循環外泌體hsa-circ-0004771升高來源於腫瘤

為了探究循環外泌體hsa-circ-0004771的起源,檢查了十對從CRC患者手術前後收集的血清標本。結果表明,循環後的外泌體hsa-circ-0004771的表達明顯降低,這表明外泌體的hsa-circ-0004771的表達增加可能是腫瘤引起的。exosomal hsa-circ-0004771的相對表達結果也已通過TEM,nanosight粒子跟蹤分析和Western印跡得到了證實。在CRC細胞的培養基(HCT-116和SW-480)中顯示,外泌體hsa-circ-0004771表達的增加取決於細胞數量和培養時間。此外,我們應用了已知的外泌體阻滯劑GW4869來抑制外泌體的分泌。我們發現外泌體hsa-circ-0004771的表達在培養基中顯著下調,但在CRC細胞中沒有顯著變化。


其中,第2個這個問題,是因為是篩選得到候選標誌物,並不一定在外泌體中就存在。需要做一些小規模的實驗,收集一些患者和健康樣本來驗證以下是外泌體中表達篩選得到的RNA標誌物,而且在患者和健康對照中存在差異。第4個問題是外泌體也可以是正常組織分泌。循環外泌體標誌物的上調,來源於腫瘤組織會更加有臨床意義。於是可以總結成一種比較成熟的研究思路:

首先通過資料庫分析疾病表達譜,篩選得到候選的RNA標誌物,視數據集來源可以篩選得到miRNA或者circRNA等等。這個就和選擇的疾病以及能夠查到的數據集有關。然後通過建立獨立陣列去驗證,再在細胞系上通過測定時間相關的分泌量和阻斷實驗去研究外泌體的來源。

細胞外囊泡是近兩年最大的研究熱點,近幾年各種RNA標誌物輪流登上舞臺成為科學家們追捧的對象,miRNA,lncRNA 和circRNA也是發文章常見的標誌物。通過生信+實驗的結合,不僅能夠很好的結合熱點去挖掘新的標誌物,這些RNA標誌物的鑑定也是通過qPCR即可,實驗比較簡單,也有很多的現成成熟的服務。這也適合想要抓住熱點研究,但是苦於前期沒有數據的醫生,通過生信積累一定工作量和實驗數據,後期再進行實驗的研究。標誌物的研究可以通過結合熱點領域來進行創新,循環外泌體是一個研究的前沿,大家在暫時沒有其他創新想法的時候可以考慮這種思路。


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