作為癌症的重要特性之一,染色體不穩定性會導致微核(micronuclei)的形成,後者易於破裂的特性使雙鏈DNA暴露於胞質中,結合雙鏈DNA感受器cGAS【1】。cGAS催化信使分子cGAMP的合成,激活接頭分子STING,從而活化I型幹擾素通路,增加腫瘤細胞的免疫原性及免疫細胞的浸潤。
除了胞內通路,腫瘤細胞合成的cGAMP亦會釋放至胞外,被浸潤於腫瘤微環境中的免疫細胞所攝取,激活後者胞內的STING通路,增強其殺傷力【2,3】。目前發現,腫瘤細胞通過使胞內的STING通路將信號更多轉導至非經典NF-κB通路而非IFN通路,從而實現免疫逃逸,且NF-κB的非經典途徑活化反而加速了癌症進展【4】。然而,腫瘤是否存在針對胞外cGAMP的免疫逃逸機制尚不清楚。
2020年12月28日,美國紀念斯隆凱特琳癌症中心Samuel F. Bakhoum等在Cancer Discovery雜誌在線發表題為Metastasis and immune evasion from extracellular cGAMP hydrolysis的研究論文,發現腫瘤細胞通過ENPP1水解胞外的cGAMP抑制免疫細胞的活化,且cGAMP水解後產生的腺苷進一步抑制了抗腫瘤免疫,並促進腫瘤轉移。
作者首先構建了染色質高度不穩定和低度不穩定的MDA-MB-231乳腺癌細胞系,發現胞外核苷酸酶ENPP1在前者中高表達,且富集於細胞膜上。在小鼠肺腺癌模型(搭載KRAS-G12D突變及p53缺失)中,ENPP1在普通組織中表達量很低,其表達量隨腫瘤進展和轉移而逐漸升高。敲除ENPP1並不影響腫瘤的生長,但抑制了其轉移,且敲除ENPP1後胞外/胞內cGAMP水平比大幅上升。缺失酶活性的ENPP1-T328A突變體則並不影響腫瘤轉移,表明ENPP1的促轉移功能是依賴其核苷酸酶活性的。
之前已有報導發現ENPP1可以水解cGAMP產生AMP和GMP[5],AMP可以在胞外被CD73(NT5E)水解為腺苷,而腺苷可以抑制抗腫瘤免疫並促進腫瘤轉移。基於此,作者採用了加入EHNA(腺苷脫氨酶抑制劑)和NMBPR(抑制細胞攝取腺苷)的培養基,發現敲除cgas或ENPP1顯著降低了培養基中的腺苷含量,並抑制了4T1細胞遷移。相應地,過表達ENPP1或加入外源cGAMP則促進了4T1細胞遷移,但如果同時加入腺苷受體A2B抑制劑PSB115,則恢復了4T1細胞的遷移水平。以上結果表明,ENPP1通過水解cGAMP並最終產生腺苷,促進癌細胞的轉移。
進一步,作者發現在小鼠成瘤模型中,敲除腫瘤細胞的ENPP1可以促進GM-CSF的產生,並增強了各種免疫細胞的浸潤,並抑制了腫瘤轉移。共敲除4T1細胞中的cgas和ENPP1則降低了免疫細胞的浸潤水平,表明ENPP1對腫瘤免疫的抑制依賴於胞內cGAS產生的cGAMP。此外,在小鼠模型中,ENPP1的缺失加強了免疫檢查點封閉療法(ICB)的療效,而ICB則對過表達ENPP1的腫瘤完全無效。但在缺失STING(TMEM173-/-)的小鼠中,ENPP1對ICB的療效沒有影響,說明ENPP1可能通過水解cGAMP抑制了浸潤免疫細胞中的STING激活,從而達成免疫抑制。而在4T1細胞中敲除STING反而抑制了腫瘤的轉移。
ENPP1和cGAS對ICB在荷瘤小鼠上的療效的影響
最後,作者通過對臨床樣本的分析,發現ENPP1在多種腫瘤的轉移灶內高表達。資料庫分析表明,當腫瘤細胞cGAS低表達時,ENPP1表達量與免疫細胞的浸潤無關;但當cGAS高表達時,ENPP1表達量與免疫細胞的浸潤及ICB的療效顯著負相關。cGAS和ENPP1共同高表達的三陰性乳腺癌(TNBC)患者預後最差。同時值得注意的是,TNBC腫瘤微環境的基質細胞中ENPP1表達量同樣較高,表明腫瘤細胞可能通過某種機制上調了微環境其它細胞中ENPP1的表達量,以共同促進免疫逃逸。
機制示意圖
綜上,本文報導了ENPP1通過水解腫瘤細胞cGAS產生的胞外cGAMP,抑制浸潤免疫細胞中STING的活化,並通過AMP進一步水解產生的腺苷促進腫瘤轉移。本文不僅揭示了新的潛在癌症治療靶點,結合作者課題組之前對STING促進腫瘤轉移的報導,更對當前抗癌界炙手可熱的新星——STING激動劑的應用提出了潛在風險,尤其是通過cGAS激活STING的寡核苷酸類分子。這提示我們STING激動劑的適應症和給藥方式都需要更精確的把控。作者提出,靶向ENPP1可能比直接激活STING更具應用價值:一方面,抑制ENPP1可能使更多cGAMP趨向分泌至胞外,活化免疫細胞,而非激活胞內的STING,從而避免STING激動劑的雙刃劍作用;另一方面,ENPP1在普通組織中表達量很低,在染色質高度不穩定的轉移性腫瘤中則表達量高,故其抑制劑有相對明確的適應症,且給藥方式不需要像STING激動劑一樣複雜。
原文連結:
https://cancerdiscovery.aacrjournals.org/content/early/2020/12/23/2159-8290.CD-20-0387
參考文獻:
1. Harding SM, Benci JL, Irianto J, Discher DE, Minn AJ, Greenberg RA. Mitotic progression following DNA damage enables pattern recognition within micronuclei.Nature. 2017;548(7668):466-470. doi:10.1038/nature23470
2. Marcus A, Mao AJ, Lensink-Vasan M, Wang L, Vance RE, Raulet DH. Tumor-Derived cGAMP Triggers a STING-Mediated Interferon Response in Non-tumor Cells to Activate the NK Cell Response.Immunity. 2018;49(4):754-763.e4. doi:10.1016/j.immuni.2018.09.016
3. Carozza, J.A., Bhnert, V., Nguyen, K.C. et al. Extracellular cGAMP is a cancer-cell-produced immunotransmitter involved in radiation-induced anticancer immunity.Nat Cancer1, 184–196 (2020). doi:10.1038/s43018-020-0028-4
4. Bakhoum SF, Ngo B, Laughney AM, et al. Chromosomal instability drives metastasis through a cytosolic DNA response.Nature. 2018;553(7689):467-472. doi:10.1038/nature25432
5. Li L, Yin Q, Kuss P, et al. Hydrolysis of 2'3'-cGAMP by ENPP1 and design of nonhydrolyzable analogs.Nat Chem Biol. 2014;10(12):1043-1048. doi:10.1038/nchembio.1661
來源:BioArt