食品店用菌粗蛋白質含量測定方法

2021-01-08 中國食用菌商務網

    GB/T 15673─1995



  1 主題內容與適用範圍
  本標準規定了食用菌中粗蛋白質含量的測定方法。
  本標準適用於食用菌中粗蛋白質含量的測定。


  2 引用標準
  GB 12530 食用菌取樣方法
  GB 12531 食用菌水分測定


  3 方法提要或原理
  採用半微量凱氏定氮法,即在加速劑存在下,以硫酸破壞樣品中有機物,加鹼蒸餾,滴定所釋放的氨,計算出其含氮量。含氮量乘上換算係數6.25即得樣品的粗蛋白質量。菇類可消化蛋白質是粗蛋白的70%左右,含氮量乘上4.38,即為可消化蛋白質的含量。


  4 試劑
  分析中,除另有說明,均限用分析純試劑、蒸餾水或相當純度的水。

  4.1 硫酸(GB 625):分析純或化學純,密度1.84g/mL。

  4.2 鹽酸(GB 622):密度1.18g/mL。

  4.3 氫氧化鈉溶液:濃度400g/L,用分析純或化學純氫氧化鈉(GB 629)配製。

  4.4 硼酸(GB 628)溶液:濃度20g/L,為蒸餾時的吸收液。

  4.5 加速劑:將600g硫酸鉀(HG 3—920)和100g五水合硫酸銅(GB 665 CuSO4·5H2O)混勻,充分研磨後過40目篩,試劑瓶內密封保存。
4.6 鹽酸標準溶液:濃度0.05mol/L或0.1mol/L,用無水碳酸鈉或鄰苯二甲酸氫鉀標定其濃度,精確到小數點後第四位。

  4.7 甲基紅-溴甲酚綠混合指示劑:50mL濃度為2g/L的溴甲酚綠(HG 3—1220) 95%乙醇(GB 679)溶液和10mL濃度為2g/L的甲基紅(HG 3—958)95%乙醇溶液混合。


  5 儀器、設備

  5.1 電熱鼓風乾燥箱。

  5.2 小型植物粉碎機:備有1mm孔徑的金屬篩網。

  5.3 分樣篩:備有孔徑0.42mm(40目)和孔徑0.84mm(20目)篩子。

  5.4 玻璃研缽:備有研杵。

  5.5 廣口瓶:帶磨口。

  5.6 剪刀和小刀。

  5.7 分析天平:感量0.0001g。

  5.8 扭力天平。

  5.9 可調電爐:0~600℃。

  5.10 通風櫥。

  5.11 消煮架:鐵製,可使凱氏瓶在消煮時與垂直方向成30°~45°角。

  5.12 硬質凱氏瓶:容積100mL。

  5.13 半微量凱氏定氮蒸餾裝置。

  5.14 半微量滴定管:10mL。

  5.15 彎頸三角漏鬥:直徑25mm。

  5.16 錐形瓶:250mL。


  6 樣品

  6.1 取樣方法和數量
  6.1.1 幹製品(蘑菇乾片、幹香菇、黑木耳和銀耳等)按GB 12530中規定要求進行。總量不得少於100g。
  6.1.2 鮮菇在每批不同的地方隨機取樣作為原始樣品,總量不得少於1000g。

  6.2 試樣的製備
  6.2.1 幹品直接用剪刀剪成小塊,在80~100℃乾燥箱中烘至發脆後冷卻,立即用小型植物粉碎機粉碎。棄去開始粉碎出的樣品(約佔總樣十分之一)。粉碎過的樣品均需過40目篩。未能過篩部分再次粉碎或經研缽內研磨之後再過篩,直至全部樣品過篩為止。銀耳和木耳樣品因質地關係經粉碎後大部分樣品不能過40目篩,故要求全部樣品過20目篩,過篩後的樣品裝入清潔的廣口瓶內保存備用。樣品密封后填寫標籤,註明品名、日期、交樣單位和取樣人等。
  6.2.2 鮮菇取樣後立即切成4mm厚度的菇片,鮮耳則用手撕成小塊均勻地攤在乾燥箱內墊有紗布的鐵絲網上,50℃鼓風乾燥6h以上。待樣品半乾後再逐步提高溫度至80~100℃。樣品發脆之後冷卻,立即用粉碎機粉碎。其他操作同幹品。


  7 分析步驟

  7.1 稱樣:稱取試樣0.3~0.5g(蘑菇、香菇、草菇和平菇等高蛋白質的樣品為0.3g,木耳、銀耳和茯苓等低蛋白質含量的樣品則為0.5g),精確到0.0001g。同時按GB 12531中規定的方法稱樣測定試樣的含水量。

  7.2 消煮:試樣無損地倒入凱氏瓶中,加入加速劑粉末(4.5)3.5g,混勻,最後加入濃硫酸(4.1)5mL,輕輕搖動凱氏瓶使試樣完全溼潤。消煮時利用消煮架將凱氏瓶斜放在電爐上加熱。瓶口加彎頸三角漏鬥。開始時緩慢地加熱,待瓶內硫酸液沸騰後,調節電爐溫度,防止泡沫衝到凱氏瓶頸上。經常旋轉凱氏瓶,直至有機物完全炭化、泡沫消失為止。隨後用猛火加熱,使溶液不斷處於沸騰狀態。溶液變清呈綠色之後繼續加熱0.5h後結束。整個過程在通風櫥內進行。

  7.3 蒸餾:裝好半微量定氮蒸餾裝置。使用前用蒸餾水衝洗乾淨。在蒸氣發生瓶內加入2/3~3/4容積的蒸餾水。將冷凝管下端插入盛有10mL硼酸吸收液(4.4)的250mL錐形瓶液面下,吸收液中預先加入5~6滴混合指示劑(4.7)。通電加熱,待蒸氣產生後開始蒸餾。從加樣口將凱氏瓶中消煮好的樣品液倒入,並用蒸餾水衝洗凱氏瓶數次,確保樣品全部加入。立即加入氫氧化鈉溶液(4.3)20mL,使樣品溶液呈強鹹性。加樣口蓋塞封閉,通入蒸氣,使反應室內蒸餾液猛烈沸騰,釋入出的氨被吸收液所吸收,待吸收液開始變綠色之後繼續蒸餾5~6min,吸收液總量達100mL左右時停止蒸餾。

  7.4 滴定:取出吸收瓶,用鹽酸標準液(4.6)將吸收液由藍綠色滴定至灰紫色為終點。

  7.5 空白試驗:不加試樣的加速劑和濃硫酸作為空白樣品,按上述步驟同時進行測定。空白試驗所消耗的鹽酸標準溶液體積須小於0.25mL。


  8 分析結果的計算

  8.1 計算

  粗蛋白質(幹基,%)=〔c(V2-V1)×0.014×6.25〕/〔m(1-X)〕×100
  式中:c── 鹽酸標準溶液的濃度,mol/L;
  V1── 空白試驗滴定消耗的鹽酸標準溶液體積,mL;
  V2── 樣品滴定消耗的鹽酸標準溶液體積,mL;
  m── 樣品的質量,g;
  0.014── 氮的摩爾質量,g/m mol;
  X── 樣品含水量,%;
  6.25── 氮換算成粗蛋白質的係數。

  8.2 允許差
  取平行測定結果的算術平均值為測定結果,保留小數後一位。
  平行測定結果的絕對差值不大於0.2%。

 

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