基因過表達/幹擾細胞系原理知識知多少?-源井生物

2020-12-03 源井生物

利用CRISPR-U的技術優勢,源井生物已成功在超過100種細胞系上實現基因編輯,詳看下表 ↓

基因過表達細胞系

通過慢病毒感染法或核轉染法,將過表達載體轉入細胞中,根據預先摸索的最佳藥篩濃度,對細胞進行藥物篩選,直到對照組細胞全部死亡,獲得基因穩定表達的細胞株。

服務流程和質量控制

可選擇源井生物YOE系列載體類型

基因幹擾細胞系

通過慢病毒法將幹擾載體轉入細胞中,根據預先摸索的最佳藥篩濃度,對細胞進行藥物篩選,直到對照組細胞全部死亡,獲得基因幹擾的穩定細胞株。

服務流程和質量控制

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  • 基因過表達/幹擾細胞系的原理?
    利用CRISPR-U的技術優勢,源井生物已成功在超過100種細胞系上實現基因編輯,詳看下表 基因過表達細胞系通過慢病毒感染法或核轉染法,將過表達載體轉入細胞中,根據預先摸索的最佳藥篩濃度,對細胞進行藥物篩選,直到對照組細胞全部死亡,獲得基因穩定表達的細胞株。
  • 關於基因敲除U251細胞系的應用-源井生物
    應用:發現PAX6-敲除的U251細胞系具有增強的增殖和集落形成能力轉錄因子PAX6在包括U251細胞系在內的各種癌細胞系中表達。在間變性星形細胞膠質瘤中,PAX6表達與腫瘤級別成反比,從而導致膠質母細胞瘤(最高級別的星形細胞膠質瘤)中PAX6表達低。U251細胞系通常用作膠質母細胞瘤研究的實驗模型。
  • CRISPR-U基因敲除細胞系-源井生物
    CRISPR-U 是源井生物自主研發的應用於基因編輯細胞系的獨家技術(基於CRISPR / Cas9技術),通過優化基因編輯載體和基因編輯流程,CRISPR-U 技術的基因切割效率和重組效率是普通的CRISPR/Cas9技術的10倍以上,輕鬆實現細胞水平的基因敲除(KO)、基因點突變
  • 這是基因敲除KYSE-150細胞系的成功秘籍-源井生物
    EZH2的CRISPR / Cas9基因編輯已在KYSE150和KYSE450細胞中成功進行,並通過EZH2蛋白表達的顯著降低得到證實。 CCK-8和集落形成分析表明,敲除CRISPR EZH2後,PSMA3-AS1的過表達並不影響食道癌細胞的增殖(圖6B和6C)。
  • 一次讀懂基因敲除Vero細胞系-源井生物
    本文描述的工作遵循了之前的兩個出版物,它們報告了通過對大規模疫苗生產中使用的Vero細胞系進行基因修飾來增強脊髓灰質炎病毒和輪狀病毒疫苗生產的策略。 CRISPR / Cas9基因編輯工具被用於敲除先前顯示在脊髓灰質炎和輪狀病毒生產中起作用的Vero目標基因。隨後,開發了當前行業製造系統的小規模模型,並採用該模型來評估多種穩定的敲除細胞系對脊髓灰質炎和輪狀病毒產量的增加。
  • 基因敲除 NCI-H1299細胞系助力肺癌研究-源井生物
    另外,H1299細胞具有TP53基因的純合部分缺失,因此它們不表達會導致其增殖傾向的抑癌p53蛋白。此外,據報導,這些細胞可以分泌肽激素神經調節素B(NMB),但不能分泌胃泌素釋放肽(GRP)。具有這些有趣的特徵,NCI-H1299細胞成為涉及基因敲除,基因敲入和點突變的生物學領域的流行基因敲除細胞系。 肺癌是全世界男性和女性中第二大最普遍,最致命的惡性腫瘤。
  • Crispr基因敲除細胞系系統分析-源井生物
    然而某些細胞組織即使可以敲除也不能單獨進行研究,因此該細胞在某些組織中必須是無活性的,而在其他組織中必須保持活性。利用這項技術,科學家可以在發育的特定階段中基因敲除細胞系,並研究敲除一個組織中內的基因如何影響其他組織中的相同基因。
  • Crispr基因敲除細胞系系統分析-源井生物
    利用這項技術,科學家可以在發育的特定階段中基因敲除細胞系,並研究敲除一個組織中內的基因如何影響其他組織中的相同基因。研究人員通過操縱秀麗隱杆線蟲的體細胞譜系中RNA指導的DNA核酸內切酶CRISPR-Cas9的表達,開發了一種條件敲除策略。研究人員表明,這種CRISPR-Cas9體細胞技術提供了一種快速有效的方法來在不同發育階段的各種細胞類型中產生條件基因敲除。此外,研究人員證明,這種方法優於我們最近開發的體細胞TALEN技術,並且可以一步生成多個基因細胞的條件敲除。
  • 基因敲除A549細胞系你不能錯過的文章-源井生物
    簡介:A549細胞系是於1972年建立的人類非小細胞肺癌細胞系。科學家通過一位58歲的白種人男性的腺癌肺組織的外植體腫瘤轉移並培養了該細胞系。該細胞系目前被用作體外和體內模型,通過一些基因編輯技術(例如CRISPR / Cas 9)研究肺癌和正在開發的藥物療法,這使A549成為適合基因敲除的細胞系。基因敲除的定製過程。A549細胞的快速繁殖可以歸因於環氧合酶2的顯著表達。在體外培養A549細胞時,它們通常會生長成附著或緊密依附著培養基的單層細胞。
  • CRISPR-U基因編輯細胞系
    CRISPR-U基因編輯細胞系原理 CRISPR-U是源井生物自主研發的基因編輯技術(基於CRISPR / Cas9技術),CRISPR-U技術比普通CRISPR/Cas9技術的基因切割效率更高,同時可以大幅度提升同源重組效率,輕鬆實現細胞和動物水平的基因敲除(KO)、基因點突變(PM)和基因敲入
  • 基因幹擾載體的簡述
    RNA幹擾(RNA interference, RNAi)是指在進化過程中高度保守的、由雙鏈RNA(double-strandedRNA,dsRNA)誘發的、同源mRNA高效特異性降解的現象。由於RNA具有高度的序列專一性和有效的幹擾,可以特異將特定基因沉默,從而獲得特定基因的功能喪失或者基因表達量降低。源井生物針對基因幹擾研發了一系列YSH幹擾載體,可分為慢病毒載體、普通載體、腺相關病毒載體等,廣泛應用於體外和體內研究。
  • 基因過表達載體流程圖解
    基因過表達載體將目的基因編碼區序列(CDS)克隆到相應的質粒或病毒載體上,利用骨架上構建的啟動子驅動目的基因表達,此外,可選擇報告基因進行示蹤或抗性基因進行篩選。源井生物針對基因過表達研發了一系列YOE過表達載體,可分為慢病毒載體、普通載體、腺相關病毒載體等,廣泛應用於體外和體內研究。註:源井生物根據客戶的實際需求,以豐富的實戰經驗為客戶提供定製化載體方案,方案除了上述載體骨架的選擇,還涉及啟動子可選:廣泛性/特異性/誘導型,多個目的基因間連接方式的選擇等。
  • Crispr技術基因敲除細菌-源井生物
    全基因組多功能CRISPR系統用於高通量基因型-表型作圖由於我們對細胞網絡的了解有限,因此基因組規模的工程設計是了解基因組功能必不可少的工具。不幸的是,大多數現有的全基因組和基因型-的作圖方法僅限於基因組改變的單一模式,即過度表達,抑制或缺失。
  • 基因敲除EGFR細胞-源井生物
    最近的證據表明,內源性和治療誘導的細胞應激均可觸發不依賴配體的EGFR轉運和信號傳導的健壯,非規範性途徑,基因敲除技術從而為癌細胞提供生存優勢和對治療的抵抗力。表皮生長因子受體(EGFR)的擴增和基因突變被認為與預後呈負相關。在這項研究中,研究人員使用蛋白質組學確定UBXN1是EGFR突變vIII(EGFRvIII)的負下遊調控因子。通過生物信息學分析,研究人員發現UBXN1是可以改善神經膠質瘤患者總體生存時間的因素。研究人員還確定,在存在EGFRvIII的情況下,UBXN1的下調是由H3K27me3的上調介導的。
  • 醫學突破的先鋒——CRISPR介導的HeLa細胞基因編輯|源井生物
    與許多腫瘤一樣,Hela細胞具有錯誤組成的基因組,其中多個染色體有一個或多個拷貝:正常細胞有46條染色體,而Hela細胞包含76至80條染色體,其中一些染色體嚴重突變。同時,這些細胞還表達了過反應性端粒酶,即每次分裂後重建端粒,防止細胞衰老,以允許HeLa細胞無限傳代。HeLa細胞係為許多醫學突破都做出了貢獻,從研究太空零重力效應和脊髓灰質炎疫苗的開發,到白血病、愛滋病病毒和癌症的全球性研究。
  • 分享Hela 敲除細胞的運用-源井生物
    HeLa細胞介紹HeLa細胞與其他細胞系一樣,被稱為科研中的不朽細胞系,只要在適宜的環境中保持和維持,HeLa細胞在實驗室細胞培養板中可以無限次分裂。在基因編輯研究中,HeLa細胞成為CRISPR/Cas9 KO細胞系。
  • 基因敲除細胞系技術-源井生物
    細胞系是由具有無限分裂能力的轉化細胞群組成。這通常來源於實驗室患者或動物的細胞系的致瘤起因。細胞系在研究中可能是無價的,整個醫學領域都異常的重視。它們通常堅固並且需要相對簡單的條件,從而進行組織培養。通過這種方式,這些類型的細胞最適合用於概念驗證工作的基因敲除細胞系技術(例如生物列印設備和技術的開發和初始實施)。但是,儘管細胞系確實保留了其來源細胞類型的某些正常功能,但通常會大大降低其功能。
  • 紅棉·CRISPR基因編輯系統重磅上線_源井生物
    紅棉· CRISPR自動方案系統(紅棉系統) ,是源井生物集數千例基因編輯大數據,生物信息學和IT信息能力,重磅打造的基因編輯自動方案系統。您,僅需輸入基因和細胞系信息,1分鐘即可得到:讓基因編輯更簡單 是源井的企業宗旨,利用紅棉系統僅需1分鐘即可獲得基因敲除方案,源井生物還可以提供基因編輯載體,基因編輯病毒和基因編輯細胞系等產品和服務,
  • 基因編輯康克酵母知識科普-源井生物
    觀察到,精確同源重組的比率從缺失Po1g中的KU70基因的小於0.5%顯著增加到針對Po1gKU70Δ中的11個靶基因的單基因缺失的33%-71%。構建攜帶潮黴素B抗性標記和Cre/LoxP系統的複製質粒,並通過表達Cre重組酶最終去除酵母敲除菌株中的選擇標記基因,以促進多輪靶向遺傳操作。所得的單基因缺失突變體在生物燃料和生物化學的生產中具有潛在的應用。
  • 基因敲除大腸桿菌的代謝通量分析-源井生物
    由於實驗室培養的悠久歷史和簡便的操作,基因敲除細胞系大腸桿菌在現代生物工程和工業微生物學中起著重要的作用。 [82] Stanley Norman Cohen和Herbert Boyer在大腸桿菌中的工作,利用質粒和限制酶產生重組DNA,成為生物技術的基礎。