恆溫核酸擴增反應引物探針設計問題合集

2020-08-27 基因獸

重組酶聚合酶擴增(Recombinase Polymerase Amplification,RPA),被稱為是可以替代PCR的核酸檢測技術(由英國公司開發)。以此為基礎的核酸擴增產品,能夠在15分鐘內進行常溫下的單分子核酸檢測。該技術對硬體設備的要求很低,特別適合用於體外診斷、獸醫、食品安全、生物安全、農業等領域。

酶促重組等溫擴增(Enzymatic Recombinase Amplification,ERA),由蘇州先達基因科技有限公司(www.gendx.cn)開發,擁有全球自主智慧財產權,在低溫條件下(25-42℃)可對痕量的靶DNA片段進行特異性的擴增,在最適溫度35-40℃時,擴增反應時間僅需15分鐘,以此達到核酸快速檢測的目的。該技術同樣對硬體設備的要求很低,現已應用於研究診斷、公共衛生、食品安全、水產畜牧等各個領域。

RPA和ERA的擴增引物可以說是整個反應的關鍵所在,那麼怎樣才能設計好其引物呢?

1、RPA引物需要多長?

RPA引物一般在32至35個核苷酸之間。某些情況可能用到少於30個核苷酸的引物,但擴增過程會顯著減緩。

ERA 引物需要多長?

為了充分利用 ERA 的檢測速度和靈敏度,我們建議客戶使用 29-32 個核苷酸長 度的引物。通常情況下,PCR 引物可用於 ERA 反應體系,但這類引物的檢測速 度和靈敏度可能不及較長的引物。


2、RPA引物應當相距多遠?

這取決於你的具體應用。標準試劑盒適用於不超過500bp的擴增產物。RPA擴增產物的大小是沒有下限的,不過RPA引物一般需要擴增子超過80bp。擴增產物在100-200bp之間,可以實現最快的RPA擴增。

ERA 引物應當相距多遠?

一般而言,我們建議兩個 ERA 引物產生的擴增片段不應超過 300bp。ERA擴增片段的大小或許沒有下限,不過根據 ERA 引物最小長度,擴增片段的大小最小 約 80bp。為了獲得最快的檢測速度,最終的擴增片段長度應為 100-200bp。


3、RPA 我需要篩選多少引物?

這取決於你對檢測靈敏度的要求。舉例來說,如果目標分子上千,那麼絕大多數引物都夠用了。對靈敏度要求很高的話,最好是進行系統性的引物篩選。一開始篩選的時候,候選引物可以有10到20對。測試的引物越多,找到好引物的機率也就越大。

ERA 我需要篩選多少引物?

這取決於您對檢測靈敏度的要求。舉例來說,如果您只需要每個反應檢測 1000 個分子或以上,那麼大多數引物對都夠用了。對於極高靈敏度的檢測,最好是進 行系統性的引物篩選以找到好的 ERA 引物。最初篩選時,測試的引物條數通常 是正反向引物各 7 條。測試的引物越多,找到能夠檢測單個分子的好引物對的機率就越大。

引物設計

螢光型ERA產品探針設計

  1. 探針長度為 46-52 個核苷酸,其中至少 30 個位於 THF 位點的 5』端,另外至少 15 個位於其 3』端。
  2. 螢光團與淬滅團只能標記在胸腺嘧啶(T)上,且螢光團與淬滅團間距在2-5個鹼基
  3. THF為替換位於螢光團與淬滅團之間的某鹼基,且dT-螢光團或 dT-淬滅團與 THF 之間的核苷酸數量可以是 0、1 或 2。
  4. 探針的3』端需加上阻斷基團


試紙型ERA產品探針設計

  1. 探針長度為 46-52 個核苷酸,其中至少 30 個位於THF位點的 5』端,另外至少15個位於其 3』端。
  2. THF為替換位於螢光團下遊30bp後與阻斷基團上遊15bp之間的某鹼基
  3. 螢光團只能標記在胸腺嘧啶(T)上。
  4. 探針的3』端需加上阻斷基團

探針設計

反應需要用多少引物?

基礎反應每次需要480nM引物,有時,稍微改動一下引物的用量可以提高其性能。對不同引物濃度進行測試(從200nM 到600nM)將有助於找到最合適的引物濃度。


反應需要用多少探針?

反應一般每次需要120nM探針。不過,略微改變探針的濃度有時會促進反應的進行。我們可以在一定濃度範圍內(從50nM到150nM),根據自己的具體應用對探針進行優化。


現成的PCR引物能用嗎?

RPA多半不行。絕大多數PCR引物不能用於RPA。

而通常情況下,PCR 引物可用於 ERA 反應體系,但這類引物的檢測速度和靈敏度可能不及較長的引物。


現成的PCR探針能用嗎?

不能。絕大多數常用的PCR探針並不適合RPA或者ERA反應。特別是用到了聚合酶5』-3』核酸酶活性的探針系統,這樣的酶活性完全不兼容。


篩選引物的時候必須用探針麼?

不一定。任何檢測方法都可以用來評估候選引物的性能。不過對於篩選高靈敏度引物來說,用檢測探針對擴增進行實時監控被證明是最快也最省力的方法。


引物篩選時應該用什麼樣的條件?

引物篩選的條件最好儘量模擬實際檢測時的條件,例如模板的拷貝數、樣本純度等等。


給定引物的性能還能再提高麼?

一般來說,稍微改動一下引物的序列可以提高其性能。任何給定的引物都可以通過以下方法進行優化:以單核苷酸為基礎略微改變引物的長度;或者保持引物長度不變,以1bp為基礎移動引物的位置。經過了改動的引物,需要重新進行擴增活性的測試。


RPA引物的熔解溫度應該是多少?

RPA和ERA反應是在常溫下進行的,DNA的解鏈與PCR有很大不同。傳統估算的熔點不適用於這個系統。


引物需要特別純化麼?

在進行引物篩選的時候,一般不需要純化。在其他情況下,引物的質量會造成批次間的差異。如果對一致性要求比較嚴格,最好先純化引物再進行RPA或者ERA反應。


使用引物和探針的時候還需要注意些什麼?

引物和探針需要同時添加到體系中,一先一後會使片段重組出現偏向性。


我該如何選擇探針?

如果使用適用於探針的其中一種試劑盒,需要注意的是,在標靶區域選擇探針位置時,有一些序列限制。如果存在不合理的限制,本公司可幫助您設計備選檢測 方案。


我如何配製凍幹引物、探針?

通常,用 TE(10mM Tris-Hcl pH8.0 0.1mM EDTA)來製備 100μM 的儲存溶液, 並長期儲存於-20℃。

相關焦點

  • PCR及其它核酸擴增技術
    核酸體外擴增是分子生物學研究的基礎。隨著生物技術的發展, 出現了越來越多的核酸體外擴增技術。根據其特點可分為三類: 一類是靶核酸的直接擴增, 如聚合酶鏈式反應等; 一類是探針擴增技術,如Cleavase/Invader Technology;另一類是信號放大擴增, 如HC2。
  • ERA(酶促重組等溫擴增)技術常見問題解答
    如果您已設計篩選出ERA基礎型核酸擴增試劑盒的引物,用於ERA螢光型或ERA試紙型核酸擴增試劑盒時還需要引入探針。這個意味著跑膠檢測、螢光檢測或是測流層析檢測對引物的最佳組合可能有著不同的要求。通常情況下,使用相同的引物探針從ERA螢光型轉為ERA試紙型能獲得相當可靠的結果,此時ERA試紙型螢光信號強度會大幅度減弱,但不會影響靈敏度檢測。
  • 新型冠狀病毒螢光PCR引物探針設計之我見
    業界對此進行了廣泛的討論,一個共識是造成檢出率低,假陰性率高有很多原因,包括試劑盒的靈敏度、試劑盒原材料的質量、核酸提取的效率、儀器設備的質量、操作誤差等,但是對試劑盒的靈敏度低的原因沒有系統的分析。筆者認為,引物探針設計是決定試劑靈敏度的關鍵,設計上存在的問題是內在缺陷,很難通過優化試劑盒組分和調整實驗條件來得到顯著改善。
  • 核酸快檢利器:分子恆溫擴增技術!
    上面這幅市場應用圖(如上)可以非常直觀的反應國內外這種技術的應用差距,在傳染病領域,美國的RNA恆溫擴增技術生產的試劑盒已經佔到了64%的市場份額,同比國內還是零,國內基本上還是完全依賴於傳統的篩查技術。
  • 定量PCR Taqman探針設計要領
    當然Taqman定量方法由於還是要合成探針,也給實驗操作帶來了挑戰。一般Taqman定量PCR實驗過程為:目的基因查找比對→探針與引物設計→探針與引物合成→配置反應體系→反應參數→重複實驗,優化條件→獲得曲線數據,比對標準曲線→再重複驗證。
  • 技術支撐 | 鸚鵡熱衣原體螢光環介導等溫擴增(LAMP)檢測方法的建立
    本研究應用環介導等溫擴增技術(LAMP),針對鸚鵡熱衣原體23S RNA基因序列設計引物,並進行篩選以及敏感性和特異性試驗,建立了鸚鵡熱衣原體恆溫螢光擴增方法。本研究基於環介導等溫擴增的原理,針對鸚鵡熱衣原體23S RNA基因序列設計通用引物,建立一種恆溫螢光擴增鸚鵡熱衣原體的方法。該方法可用恆溫螢光儀直接檢測螢光信號強度,從而減少了肉眼判讀結果的誤差,既增強了準確性,也避免了開蓋汙染產生假陽性。本方法的建立為鸚鵡熱衣原體病的快速診斷、實驗室鑑定和疫情監測提供了技術支撐。
  • 核酸檢測的一場革命,可替代PCR的犀利技術
    RPA反應的最適溫度在37°C - 42°C之間,無需變性,在常溫下即可進行。這無疑能大大加快PCR的速度。此外,由於不需要溫控設備,RPA可以真正實現可攜式的快速核酸檢測。據介紹,RPA檢測的靈敏度很高,能夠將痕量的核酸(尤其是DNA)模板擴增到可以檢出的水平,從單個模板分子得到大約1012擴增產物。而且RPA還用不著複雜的樣品處理,適用於無法提取核酸的實地檢測。
  • 引物合成介紹(4)
    引物鏈越長,突變的頻率累加起來就越高。研究人員總希望合成的引物萬無一失,這種心情可以理解。但是猶如PCR擴增,不可能絕對保證擴增產物中沒有突變,引物合成也不可能保證100%正確。您也可以要求我們將引物免費重合一次,不過重合的引物和第一次的引物一樣,都可能含突變,不會因為重合的引物就減少您的遇到問題的機率。基因拼接過程中,如果發現一段區域突變點不多,就多測幾個,否則就重合一下引物。
  • 科學隨筆:核酸體外擴增及核酸檢測那些事兒
    微量核酸抓著費勁,但藉助複製它的神器,問題就容易解決了。COVID-19疫情爆發,伴隨核酸檢測這個反覆出現的名詞和實際發生的事實,RT-PCR、qPCR這些專業術語也更多出現在公眾的視野中。可能有必要稍微作些了解,消除一些誤解。
  • JPA綜述:新冠病毒核酸檢測最新進展和展望
    聚合酶鏈反應(PCR)被視為具有高靈敏度和特異性的病毒和細菌感染分子診斷的金標準。等溫核酸擴增因為其在恆溫條件下無需熱循環儀即可快速操作的基本優勢,被認為是一種非常有前途的候選方法。這篇綜述總結了目前可用於冠狀病毒核酸的檢測方法,有助於研究人員和臨床醫生開發更好的技術,以及時有效地檢測冠狀病毒感染。
  • 引物合成及各種問題總結
    但是製備PAGE電泳,上樣量都是非常大,電泳時的條帶非常寬,帶與帶之間有重疊,解析度已下降,電泳後割帶回收目的引物時,很難說不割到差別僅幾個鹼基的引物。國內有一個不好的現象,PAGE純化的引物,特別是長引物要的量都比較高,導致割的條帶有時可能比較寬。建議:您如果減少OD數,引物遇到的問題可能就會少一些。19. TaqMan 探針設計的基本原則是什麼?
  • 引物(primers)設計知識介紹
    PCR的特異性要求引物與靶DNA特異結合,不與其他非目的DNA結合,PCR的靈敏性要求DNA聚合酶能對引物進行有效的延伸,可見引物設計好壞與PCR結果密切相關。引物設計原則1.引物長度 引物長度 一般為15-30個核苷酸,在做長片段PCR或做某些特殊的PCR時應使用較長的引物,但最多不超過50個核苷酸。
  • 擴增反應是使用通用引物AMix 和基因特異性引物來執行的
    3.試劑盒提供的SMARTer寡核苷酸末端延伸出一些修飾鹼基,可與第一-鏈cDNASMARTer寡核苷酸引物和RNA一端結合後,可以合成完整的雙鏈cDNA拷貝。由於反轉錄酶只有到達mRNA模板末端後才發生模板轉換,因此SMARTer序列通常只能滲入全長的單鏈cDNA.
  • 如何設計PCR引物
    1、引物長度一般在15-30bp。
  • 腫瘤基因突變檢測不需要測定核酸濃度,直接PCR!
    PlexPrime具有以下特點:多重兼容性:在一個反應裡檢測多種突變全能性:適用於非保守易變異等難度大的序列高特異性:使用插入序列顯著提高了親本序列和擴增產物的差異PlexPrime引物由三部分組成5 '區域將引物固定在靶標的一個特定位置上;3』區域引入一個與突變鹼基匹配鹼基,從而選擇性地放大靶標序列;插入序列作為一個橋接結構,它既可以作為特殊序列插入到靶標,並複製到擴增產物裡
  • 酶促重組等溫擴增(ERA)技術簡介
    ,通過不同的核酸擴增反應體系進行優化組合,從而獲得核心的重組等溫擴增體系,即(Enzymatic Recombinase Amplification)ERA技術方法,並將方法申請了國家專利和國際專利(申請號:201910262085.3;PCT201910262085.3)。
  • 酶促重組等溫擴增(ERA)技術簡介
    酶促重組等溫擴增技術(ERA技術)是蘇州先達基因公司(www.gendx.cn)研發團隊研發的具有全球自主智慧財產權等溫核酸擴增技術,它利用抗體製藥領域先進的Molecular Design、Directed Evolution、Affinity Maturation 等技術手段,將來源於細菌,病毒和噬菌體的特定工具酶進行改造突變並篩選其功能,通過不同的核酸擴增反應體系進行優化組合,從而獲得核心的重組等溫擴增體系
  • 一文揭秘核酸檢測完整流程
    HIV核酸定性檢測技術,其檢測過程分為核酸提取、逆轉錄合成cDNA、PCR擴增反應、擴增產物定性分和結果判定和完成報告單。逆轉錄合成cDNA 逆轉錄cDNA合成反應需使用逆轉錄引物、dNTPs、逆轉錄酶、RNA酶抑制劑、DTT、緩衝液和適量無RNA/DNA酶的超純水以及RNA模板。在擴增儀或水浴箱中,在規定的溫度和時間下進行逆轉錄反應。建議使用商品化RT-PCR一步法試劑進行第一輪擴增反應。
  • 乾貨丨引物設計有妙招,3款軟體就能搞定!
    Primer Premier 5.0 破解版下載連結:後臺回復「引物設計1」即可獲取!    主要應用:核酸序列引物分析設計,同時計算核酸序列的雜交溫度(Tm)和理論預測序列。主要功能:普通引物對的搜索、測序引物的設計、雜交探針的設計以及評估引物對質量等等。Oligo7.37破解版下載連結:後臺回復「引物設計2」即可獲取!
  • 小白qPCR掃盲和2個超讚的在線引物設計網站介紹!
    首先,實時螢光定量PCR是一種在DNA擴增反應中,以螢光化學物質測每次聚合酶鏈式反應(PCR)循環後產物總量的方法。通過內參或者外參法對待測樣品中的特定DNA序列進行定量分析的方法。探針完整時,報告基團發射的螢光信號被淬滅基團吸收;當PCR擴增時,Taq酶的5』-3』外切酶活性將探針酶切降解,使報告螢光基團和淬滅螢光基團分離,從而螢光監測系統可接收到螢光信號。