免疫組化的經驗總結(3)-操作要點和技巧

2021-01-10 生物谷

1.  固定:最好用4%的多聚甲醛固定液。對於冰凍切片,甲醛固定有時比冰凍丙酮好;但對於不同的組織和抗原,可選用不同的固定液。 有時候商品化的抗體會有比較適合而推薦的固定液,請於購置前注意說明書。
Bouin S固定液:飽和苦味酸750ml,甲醛250ml,冰醋酸50ml,其對組織的穿透力較強,固定較好,結構完整,但因偏酸,對抗原有一定損害,且組織收縮明顯,不適於組織標本的長期保存。
PLP液:即高碘酸鈉-賴氨酸-多聚甲醛,適於固定石蠟切片。適於富含糖類組織,對超微結構及許多抗原的抗原性保存較好。
2.組織脫水,透明:時間不能太長,否則在切片時容易碎片,切不完整。
3.切片時展片:有些組織在切片後難以在水中展開,這時可適當地在水中加入幾滴乙醇。
4.烤片:60℃ 30分鐘或37℃ 過夜,溫度太高或時間太長,抗原容易丟失。
5.蠟塊及切片的保存:最好在4℃保存
6.脫片問題: Poly-L-Lysine(多聚賴氨酸)為目前免疫組化染色工作中最常用的一種防脫片劑,6ml的多聚賴氨酸溶液可按1:10稀釋成60ml的工作液,適合於需要酶消化、微波、高溫高壓的防脫片處理。如不行,可用雙重處理(APES和Poly-L-Lysine)的切片。在以上兩種條件都行不通的情況下,可用如下方法:切片在脫蠟前,放在APES 1:50 丙酮溶液中浸泡3分鐘,晾乾,即可進行下一步。
7.滅活內源性酶:HRP系統:3%雙氧水滅活;AP系統:3%HAc滅活。
8.暴露抗原:對於石蠟切片的免疫組化實驗時,必須採用高溫加熱抗原修復,這將有助於暴露抗原決定簇,從而增加免疫組化染色的強度(不同抗體的最佳修復液請參閱抗體說明書)。對於不同的組織,不同的抗原,不同的抗體,所採用的方法應不一樣,可進行熱修復、胰酶消化、既不修復也不消化。膠原還可以用胃蛋白酶消化等。
9.封閉:在山羊血清封閉,非特異性染色仍然較強時,可延長封閉時間或用濃縮血清封閉
10.抗體稀釋:應遵循「現用現配」的原則,對於PBS稀釋的抗體一定要當天使用。
11.背景高:在抗體濃度、反應時間、反應溫度等合適的條件下,如果背景依舊高,可採用含1‰ Tween20的PBS洗,特別是在顯色之前要多洗。
12.返藍:在蘇木素復染後,可用鹼性緩衝液(如PBS)或Na2HPO4的飽和溶液返藍。
13.顯色:一定要在顯微鏡下觀察,注意控制背景。

DAB法 顯示過氧化物酶

〔原理〕  過氧化物酶分解H2O2的過程中,下面反應不直接發生:AH2(供氫體)+H2O2→A(供氫體的氧化物)+2H2O2實驗可知,有稱為複合物 Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、的酶——底物(受氫體)複合體生成,在複合體最後分解為酶和水時,游離的原子氧使供氫體氧化而顯色。酶組織化學中所使用的供氫體應是含有色原性基團的發色物質,如奈酚和聯苯胺。

 

免疫組化染色步驟(以ABC法為例)

溶液的配置:

1. 0.1M PBS 2000ml:NaCL 18g, NaH2PO4·2H2O 0.8g, Na2HPO4·12H2O 12g. 共六份

2. 檸檬酸鹽緩衝液:

貯存液:0.1M檸檬酸溶液(A):21.01g 檸檬酸 + 1L 蒸餾水

        0.1M檸檬酸三鈉溶液(B):29.41g 檸檬酸三鈉 + 1L 蒸餾水

工作液:9ml A液+41ml B液+450ml 蒸餾水→0.01M檸檬酸鹽緩衝液

3. 0.03% H2O2-甲醇:30% H2O2 0.4ml + 400ml 純甲醇→充分混勻

4. 20% 甘油:80ml 純甘油 + 320ml 蒸餾水

5. 稀釋抗體:1︰300 ,1︰400 ,1︰600 (臨用前配)

6. 酒精的配置

染色步驟:一步法

1. 載玻片 烤箱中 60℃ 40′。

2. 二甲苯Ⅰ,60℃ 20′(水浴箱中),二甲苯Ⅱ,室溫 15′。

3. 脫水,100%→95%→85%→75%酒精,每級均為3′。

4. 蒸餾水衝洗,PBS 5′﹡1

5. 微波爐修復抗原:0.01M 檸檬酸鹽緩衝液,99℃ 肺 20′,心腎 12′

6. PBS 3′*3

7. 0.03% H2O2-甲醇,室溫20′

8. PBS衝洗,PBS 3′*3,甩幹或紙巾吸去多餘液體(勿碰到組織),PAP Pen劃境線。

9. block solution 封閉抗原,室溫10′。

10. 傾出封閉液,不洗,滴加一抗(60ul),4℃過夜或37℃ 1~2h。

11. PBS衝洗,3′*3。

12. 除去PBS,滴加A增強劑,室溫25′。

13. PBS衝洗,3′*3。

14. 除去PBS,滴加B劑,室溫35′。

15. PBS衝洗,3′*3。同時配置DAB顯色劑。

16. 除去PBS,DAB顯色10′(在顯微鏡下觀察染色程度控制染色時間)。蒸餾水衝洗。

17. 復染:蘇目素均勻滴加2滴,40′′,蒸餾水衝洗,60℃溫水泡半分鐘。

18. 脫水:75%酒精→85%→95%→100%(3次),每級3′。

19. 透明:二甲苯Ⅰ3′,二甲苯Ⅱ3′。

18. 封片:中性樹脂,加蓋玻片(組織部位切勿殘留小氣泡),60℃ 0.5h烘乾。

結果:棕褐色反應產物代表抗原X的定位。

 

拍照

1. 更換樣品時,除了調整焦距和視野外,顯微鏡上的其他部件都不能動!所有的樣品必須一次拍攝完全。特別是在拍攝過程中,不要一會用高倍鏡,一會用低倍鏡,來回切換物鏡。

2. 數位相機必須設置為手動曝光,並且保持每張照片用同樣的曝光條件,同樣的曝光時間,同樣的光圈。特別要注意的是,一定要將數位相機的自動白平衡功能給關掉

3. 免疫組化切片一般染色不太深,因此拍攝出的照片顏色較淺,就讓它淺。拍攝出的照片中空白部位應儘可能呈現純白色。測量其灰度應在250左右。如果呈現淡藍色,一般是相機自動白平衡在起作用。另外一個因素是顯微鏡燈光電壓不正確。要使燈光本身的色溫正確。既不偏黃,也不偏藍。

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