一、實驗目的
1 .了解質粒的特性及其在分子生物學研究中的作用;
2 .掌握鹼裂解法分離、純化質粒DNA的方法。
二、基本原理
質粒(Plasmid)是一種染色體外的穩定遺傳因子,大小從1-200kb不等,為雙鏈、閉環的DNA分子,並以超螺旋狀態存在於宿主細胞中。
質粒具有自主複製和轉錄能力,能在子代細胞中保持恆定的拷貝數,並表達所攜帶的遺傳信息。
質粒的不相容性:利用同一複製系統的不同質粒不能在同一宿主細胞中共同存在。
高鹼:
細菌的細胞膜破裂,內容物釋放。
染色體線性DNA的氫鍵斷裂,雙螺旋結構解開而變性。
質粒DNA的大部分氫鍵也斷裂,但超螺旋共價閉合環狀的兩條互補鏈不會完全分離。
高酸中和至中性:
變性的染色體DNA與變性的蛋白質以及細胞碎片凝聚成網絡狀大分子不溶性沉澱物。
質粒DNA又恢復天然構型,溶解在上清液中。
純化:
RNA酶消化除去RNA,並用酚抽提法除去殘留的蛋白質。
三、試劑及器材
1 .試劑
溶液Ⅰ:由葡萄糖、EDTA、Tris-HCl組成 (保護、緩衝)
①葡萄糖的作用是增加溶液的粘度,減少抽提過程中的 機械剪切作用,防止破壞質粒 (保護作用)。
②EDTA 的作用是絡合掉鎂等二價金屬離子, 防止DNA酶對質粒分子的降解作用(保護作用)。
③Tris-HCl 使溶菌液維持溶菌作用的最適PH範圍(緩衝作用)。
溶液II:由SDS(十二烷基硫酸鈉)與 NaOH 組成(裂解、變性)。
①SDS的作用是解聚核蛋白並與蛋白質分子結合使之變性(裂解細胞和蛋白質變性作用)。
②NaOH(PH>12)的作用是破壞氫鍵,使DNA分子變性(DNA變性作用)。
溶液III:HAc和 KAc組成的高鹽溶液 (復性,分離)。
①HAc溶液能中和溶液Ⅱ的鹼性,使染色體DNA 變性而發生纏繞,並使質粒DNA復性。
②KAc會與SDS形成溶解度很低的鹽,並與蛋白質形成沉澱而除去;溶液中的DNA也會與蛋白質-SDS複合物纏繞成大分子而與小分子質粒DNA分離。
2 .材料
攜帶PET28a質粒(卡那黴素抗性)的大腸桿菌DH5α。
3 .器材
試管,Eppendorf管,移液器,恆溫振蕩器,高速臺式離心機,冰塊,接種環,旋渦混合器。
四、操作步驟
1.培養細菌擴增質粒
將攜帶PET28a質粒的大腸桿菌接種於含卡那黴素的LB液體培養基中,37℃搖床培養16h左右。
2.收集菌體和裂解細菌
1. 取2ml菌液室溫10000 rpm離心1min。
2. 去上清,加250l溶液P1(含RNase A),渦漩振蕩器震蕩至菌體完全懸浮。
3. 加入250l溶液P2,溫和顛倒離心管4~6次,獲得澄清的裂解液。最好室溫孵育2min,劇烈混合會使剪切染色體DNA,降低質粒純度。
4. 加350l溶液P3,溫和顛倒數次混合,至出現白色絮狀沉澱。
5. 室溫13000 rpm離心10min。
6. 特別小心吸取上清,移至潔淨的裝配好容積2ml離心管的吸收柱中。要保證沒有吸入沉澱和細胞碎片。室溫10000 rpm離心1min,至裂解物完全通過吸收柱。
7. 棄濾過液,加600l 溶液PW2,10000 rpm離心1min。
8. 棄濾過液,將吸收柱置於原收集管中,13000 rpm離心1min,確保乙醇被去除(乙醇會影響下面的步驟)。
9. 將吸收柱放入乾淨1.5ml離心管,加30l無菌去離子水或EB緩衝液在濾膜上,靜置2min,13000 rpm離心1min。
五、注意事項
1.細菌培養過程要求無菌操作。細菌培養液、配試劑用的蒸餾水、試管和Eppendorf離心管等有關用具和某些試劑經高壓滅菌處理。
2.製備質粒的過程中,所有操作必須緩和,不要劇烈振蕩,以避免機械剪切力對DNA的斷裂作用。
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