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很多讀者都會遇到這樣的問題,在檢測貼壁細胞毒性時,不知道該哪種試劑,今天小編就來比較一下這兩種試劑的優劣。
首先我們來看一下CCK8與MTT的實驗原理。
CCK-8實驗:
實驗原理:
全稱為Cell Counting Kit-8,在電子載體1-Methoxy PMS存在的情況下能夠被細胞內脫氫酶還原成水溶性的甲臢染料,生成的(橙黃色)甲臢量與活細胞數量成正比,即顏色的深淺與細胞的增值成正比。因此可以用這一特性直接進行細胞增殖和毒性分析。
注意事項:
1、酚紅和血清對CCK-8法的檢測不會造成幹擾,可以通過減去空白孔中本底的吸光度而消除。
2、CCK-8試劑的顏色為淡紅色,與含酚紅的培養基顏色接近,不注意的話容易產生漏加或多加。
3、當在培養箱內培養時,培養板最外一圈的孔容易乾燥揮發,導致體積不準確而增加誤差。一般情況下,最外一圈的孔只加培養基,不作為測定孔用。
4、金屬對CCK-8顯色有影響:終濃度為1mM的氯化亞鉛、氯化鐵、硫酸銅會5%、15%、90%的抑制顯色反應,使靈敏度降低。如果終濃度是10mM,將會100%抑制顯色反應。
5、部分懸浮細胞由於染色比較困難,一般需要增加細胞數量並延長培養時間。
(圖為MTT實驗,圖為本公司實驗圖,勿盜)
MTT實驗法:
實驗原理:
全稱為 3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴鹽,商品名:噻唑藍,是一種接受氫離子的黃顏色染料,可作用於活細胞線粒體中的呼吸鏈,在琥珀酸脫氫酶和細胞色素C的作用下tetrazolium環開裂,生成藍色的formazan結晶,formazan結晶的生成量僅與活細胞數目成正比(死細胞中琥珀酸脫氫酶消失,不能將MTT還原)。還原生成的formazan結晶可在含50%的N,N-二甲基甲醯胺和20%的十二甲基磺酸鈉(pH 4.7)的MTT溶解液中溶解,利用酶標儀測定490 nm處的光密度OD值,以反映出活細胞數目。也可以用DMSO來溶解。
注意事項:
1、在用酶標儀檢測結果的時候,為了保證實驗結果的線性,MTT 吸光度最好在0-0.7 範圍內。
2、MTT一般最好現用現配,過濾後4℃避光保存兩周內有效,或配製成5mg/ml保存在-20℃長期保存,避免反覆凍融
3、避免血清幹擾:一般選小於10%的胎牛血清的培養液進行試驗。在呈色後儘量吸盡孔內殘餘培養液。
4、設空白對照:與試驗平行不加細胞只加培養液的空白對照。其他試驗步驟保持一致,最後比色以空白調零。
5、MTT檢測細胞活性的操作方法
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