HEK293細胞在轉染實驗中的作用

2021-01-16 每日生物評論

利用病毒傳遞系統來轉導細胞在基因和蛋白質研究已變得很常見,慢病毒載體就可以穩定地表達目的基因。慢病毒,屬於逆轉錄病毒,它的主要作用機制是表達逆轉錄酶,將病毒RNA轉化為雙鏈DNA,整合酶再將病毒DNA插入宿主DNA,然後和宿主細胞一起進行分裂。慢病毒可以感染分裂細胞和非分裂細胞,如有絲分裂後的細胞。

一、概述

我們都知道,病毒缺乏複製機制,所以需要細胞來「存活」。慢病毒載體傳遞系統最重要的一個方面就是慢病毒載體的生產,通常在HEK293細胞(或一些變種)。

例如,慢病毒傳遞系統的一個常見用途是插入短的髮夾RNAs (shRNA),用於RNAi介導的基因敲除。shRNA首先被包裝成慢病毒載體,然後轉染HEK293細胞。轉染的細胞孵育約3天,此間慢病毒複製和產生慢病毒顆粒,然後收穫,評價滴度,再轉化目標細胞。

二、關於轉染HEK293細胞

維持細胞的良好狀態是必要的。HEK293細胞生長迅速,胰蛋白酶化速度快,所以不要在胰蛋白酶中長時間孵育,否則可能會有大量細胞死亡。解凍後的細胞應至少傳代兩次,然後接種進行轉導實驗。並且要非常輕柔地處理,因為細胞很容易分離。在轉染實驗中,HEK293細胞接種於約5*10^6細胞/10cm培養皿中,接種後次日細胞約40-50%融合。

三、為轉導做好準備

將慢病毒載體質粒連同病毒包裝載體打包成脂質體,並將其遞送到HEK293細胞中。在實驗的包裝部分使用無血清培養基是非常重要的。無血清培養基促進DNA與陽離子脂質體複合物的形成,提高轉染效率。

有了轉染複合物,含shRNA、包裝質粒和脂質體,就可以進行包裝了。傾斜帶有HEK293細胞的培養皿,將轉染混合物逐滴加入收集的培養基中。在添加轉染混合物時要謹慎,溫柔操作。一旦加入溶液,小心地旋轉平板,使培養基混合,將轉染混合物均勻地分配到細胞上。

在無血清培養基中培養5-8小時。孵育後,輕輕抽吸培養基(這將包含沒有轉染HEK293細胞的含有質粒的脂質體),並在培養皿的一側加入10 ml完全培養基,這樣細胞就不會分離。HEK293細胞將shRNA包裹成病毒顆粒並釋放到培養基中。

此時,培養基中會充滿病毒顆粒,因此在搬運時應穿戴適當的防護用品。48小時後收集培養基(病毒顆粒),將10 ml新鮮的完全培養基加入同一培養皿中。72小時後再次收集培養基,與48小時收集的結合。通過0.45微米的過濾器對收集到的混合培養基進行消毒,以允許病毒通過。凍融循環會降低病毒的效力,所以最好進行分裝。病毒可以在4℃下保存一到兩個月,長期保存在-20℃。經常使用漂白劑處理在病毒產生過程中使用的吸管頭和平板。

四、病毒進入細胞

通常,測定病毒的效價非常重要,方便確定實驗濃度。一個良好的敲除,至少50%的細胞轉導病毒。用適當的分析方法檢查細胞是否定點敲除,通常涉及到Western Blot。

1.使用相同比例的病毒和細胞獲得50%的轉導。在一個15ml的試管中,用5ml的完全培養基重懸約200萬個細胞(10cm培養皿的四分之一)。在同一試管中,加入2.5ml病毒和15ug/ml的聚凝胺。聚凝胺通過中和病毒顆粒和細胞膜之間的電荷來提高轉導效率。

2輕輕混勻,將細胞放入一個10釐米的新培養皿中。24小時後,換到沒有病毒的新鮮完全培養基中。如果shRNA構建物含有螢光標記物,可以檢測轉染48小時後檢測是否整合成功;如果沒有,繼續進行抗生素選擇48小時。

文章來源:每日生物評論

歡迎關注微信公眾號:每日生物評論,或Bio-review

用最專業的精神,開放性的思維,與你一起探索行業走向,快速了解這個領域!

相關焦點

  • 最全HEK293細胞系匯總:這些HEK293細胞系,您都了解嗎?
    而蛋白翻譯後修飾,如糖基化修飾,會直接影響蛋白在體內的半衰期及穩定性和生物學活性、影響配體識別及結合,影響其免疫原性,影響胞間作用等等功能。目前,哺乳動物細胞已被廣泛用於重組蛋白、疫苗、抗癌試劑及其他臨床相關的藥物的生產中。CHO細胞、BHK細胞、Sp2/0等細胞常被用於製備生物製藥。
  • 【實驗工具】哭!293細胞、293T、293A、293S、293TF分不清!!
    關注我們,為您的科研路提速  293細胞系是原代人胚腎細胞轉染5型腺病毒(Ad 5) DNA的永生化細胞,表達轉染的腺病毒5的基因。293細胞比較容易轉染,是一個很常用的表達研究外源基因的細胞株。293細胞的一個衍生株:293T/17的轉染效率更高,成為廣大研究者研究基因功能的一個強大工具。293細胞的缺陷是生長過程中貼壁強度比較小。所以在實驗過程中容易流失,從而影響實驗結果。如果一個實驗室新得到的293細胞是郵寄得到的並且細胞在培養瓶中,就需要讓細胞沉降幾天時間,因為大量細胞會漂浮在培養液裡。
  • 你的293細胞是293細胞麼?
    5(Ad5)轉染的人胚腎細胞形成的永生化細胞,293 [HEK-293]細胞包含並表達轉染的Ad5基因。早期報導中指出,293 [HEK-293]細胞基因組中含有腺病毒5(Ad5)基因組的左側端和右側端的DNA,但是現在明確了只存在其左側端的DNA。經過對Ad5的插入點的克隆測序發現,Ad5的1-4344位線性核苷酸整合入293 [HEK-293]細胞19號染色體(19q13.2)。
  • 磷酸鈣法細胞轉染試劑盒的應用
    磷酸鈣沉澱法是基於磷酸鈣-DNA複合物的一種將DNA導入真核細胞的轉染方法,磷酸鈣被認為有利於促進外源DNA與靶細胞表面的結合。磷酸鈣-DNA複合物粘附到細胞膜並通過胞飲作用進入靶細胞,被轉染的DNA可以整合到靶細胞的染色體中從而產生有不同基因型和表型的穩定克隆。
  • 293細胞培養的經驗總結
    它是加拿大McMaster University的F.L.Graham與J.S.Miley於1976年用DNA轉染技術構建而成。293細胞是貼壁依賴型呈上皮樣細胞,表現出典型的腺病毒轉化細胞的表型,細胞允許Ad5和其他血清型腺病毒在其上增殖。哺乳細胞的大規模培養方式有三種:貼壁培養、微載體培養、無血清懸浮培養。這三種方式均可用於293細胞的大規模培養。
  • 細胞&體內轉染新攻略
    轉染實驗方法:                    利用其自身的內吞機制:          轉染會損傷細胞
  • 細胞轉染的注意事項
    哺乳動物細胞系合成可溶的,翻譯後修飾的蛋白,比細菌,真菌或昆蟲細胞中表達的蛋白更有可能有生物活性。穩定轉染的細胞可以合成大量的重組蛋白,而瞬時轉染細胞可以快速表達,迅速地合成小量蛋白。常用的細胞系包括CHO,293和COS-7。Invitrogen提供克隆的293-F,293-H,COS-7和CHO-S細胞,來源於經篩選轉染效率更高的亞細胞系。
  • 【細胞培養】細胞系293和293T的簡介
    細胞名稱293 和 293T種屬人組織來源293細胞是轉染腺病毒E1A基因的人腎上皮細胞系,293T細胞由293細胞派生,同時表達SV40大T抗原,含有SV40複製起始點與啟動子區的質粒可以複製。用Ca3(PO4)2轉染效率可高達50%。蛋白表達水平高,轉染後2-3天用鹼性磷酸酶分析可較容易地檢測到表達的蛋白。瞬時轉染293T細胞是過表達蛋白並獲得細胞內及細胞外(分泌的或膜)蛋白的便捷方式。
  • 懸浮培養HEK293細胞包裝病毒載體的過程優化
    2、實驗結果:在轉染時活細胞密度為1×106cells/ml條件下,結果顯示一組獨特的參數,轉基因質粒的濃度更高,較短的孵育時間,丁酸鈉的添加等條件,詳述如下:1) DNA濃度:1 µg/uL,藉由案例1可知,高細胞密度下,可降低此值;2) PEI/DNA比例:2,較高的比例並不能帶來更好的病毒滴度;
  • 轉染竟可以如此簡單
    轉染實驗是我們經常做的,可時常讓我們遇到心塞的情況:轉染效果不明顯,起不到轉染作用;用力過猛,毒性太大使細胞死掉。
  • 實驗專欄丨手把手教你質粒轉染
    細胞轉染是指將外源分子如DNA,RNA等導入真核細胞的技術。常規轉染技術可分為瞬時轉染和穩定轉染(永久轉染)兩大類。本實驗室主要是質粒轉染、miRcroRNA轉染、慢病毒轉染、藥物轉染、多肽轉染等。六孔板、CO2培養箱、EP管、酒精燈等;無血清培養基、MEM-α或DMEM、CO2培養箱、EP管、質粒、細胞等1當六孔板中細胞密度達90%時,準備轉染,將無血清培養基、MEM-α或DMEM取出復溫並注意平衡好(以六孔板為例,其他孔板都可以按照說明書進行);2取出細胞,將培養基換成無血清培養基,放回孵箱培養;3取滅菌的EP管
  • T細胞轉染,用Nucleofector LV大規模流式核轉染
    動物細胞轉染技術多樣,包括化學法、病毒轉導、傳統電穿孔法等。化學轉染磷酸鈣沉澱法、DEAE-葡聚糖、脂質體轉染等,操作簡單快捷,但大部分原代細胞、幹細胞、細胞系轉染效率低下,僅有少數貼壁細胞系轉染較高效,批次間重複性差。使用慢病毒、腺病毒、逆轉錄病毒的病毒轉導技術,雖然轉染效率高,但轉染底物有局限,轉染的基因片段大小需<10kb。
  • LONZA 4D-Nucleofector LV大規模流式細胞核轉染,高效轉染T細胞
    動物細胞轉染技術多樣,包括化學法、病毒轉導、傳統電穿孔法等。化學轉染磷酸鈣沉澱法、DEAE-葡聚糖、脂質體轉染等,操作簡單快捷,但大部分原代細胞、幹細胞、細胞系轉染效率低下,僅有少數貼壁細胞系轉染較高效,批次間重複性差。使用慢病毒、腺病毒、逆轉錄病毒的病毒轉導技術,雖然轉染效率高,但轉染底物有局限,轉染的基因片段大小需<10kb。
  • 胚胎幹細胞轉染
    如何將一段螢光標記的寡核苷酸轉染入小鼠胚胎幹細胞中?實驗中該寡核苷酸有24個鹼基,沒有編碼蛋白質的功能,僅僅是起到誘導基因甲基化的作用。幹細胞纏繞方法有有三種,電穿孔法、脂質體轉染辦法、核轉染辦法,其中電穿孔法和脂質體轉染率僅為20%左右,核轉染法轉染率達到80%左右。
  • 細胞轉染技術大比拼!
    細胞轉染的方法主要包括:人工脂質體法、磷酸鈣法、DEAE-右旋糖苷法、電穿孔法、病毒轉導法等,上期詳解了細胞轉染常用的方法-脂質體轉染的原理和步驟 等,今天做個細胞轉染技術大比拼,了解各種細胞轉染的方法優缺點,再根據自己的實驗要求選擇理想的方法,獲得漂亮的實驗結果。
  • 知識分享:細胞轉染
    實驗原理:轉染是將外源性基因導入細胞內的一種專門技術。隨著基因與蛋白功能研究的深入,轉染目前已成為實驗室工作中經常涉及的基本方法。常規轉染技術可分為兩大類,一類是瞬時轉染,一類是穩定轉染(永久轉染)。這種聚陽離子能將各種報告基因轉入各種種屬細胞,其效果好於脂質聚醯胺,經進一步的改性後,其轉染性能好於樹枝狀聚合物,而且它的細胞毒性低。大量實驗證明,PEI是非常有希望的基因治療載體。目前在設計更複雜的基因載體時,PEI經常做為核心組成成分。
  • 實驗大揭秘:轉染是如何進行的
    轉染是將核酸導入真核細胞中的過程,是細胞生物學、基因表達和基因抑制實驗中的關鍵步驟。
  • 細胞轉染技術集結及注意事項
    在研究基因功能、調控基因表達、突變分析和蛋白質生產等生物學試驗中,其應用越來越廣泛。本文將從多方面來深度解讀細胞轉染技術及一系列注意事項!細胞轉染是指將外源分子導入真核細胞內以改變其基因型或表型能力的一種技術。轉染的主要目的是研究基因的功能或基因產物,通過增強或抑制特定基因在細胞中的表達,並在哺乳細胞中產生重組蛋白。
  • 細胞轉染技術原理及應用
    常規轉染技術可分為兩大類,一類是瞬時轉染,一類是穩定轉染(永久轉染).前者外源DNA/RNA不整合到宿主染色體中,因此一個宿主細胞中可存在多個拷貝數,產生高水平的表達,但通常只持續幾天,多用於啟動子和其它調控元件的分析.一般來說,超螺旋質粒DNA轉染效率較高,在轉染後24-72小時內(依賴於各種不同的構建)分析結果,常常用到一些報告系統如螢光蛋白
  • 徐州醫科大學使用invigentech胎牛血清培養293T、HepG2細胞發表文章已見刊
    promotes the proliferation, invasion and metastasis of liver cancer cells through regulating the JAK2/STAT3 signaling文章已見刊;二、使用invigentech(英克)A6901FBS-100, FBS Brazil Origin胎牛血清;三、成功培養293T